QuEChERS-超高效液相色谱-串联质谱法检测腌腊肉中四种常用香料

李林竹1,马凯1,杨昌彪1,黄永桥2,王媛媛1,范金旭1,陶光灿1*

1(贵州省分析测试研究院,贵州 贵阳,550014)2(贵州省检验技术研究应用中心,贵州 贵阳,550014)

摘 要 建立了QuEChERS-超高效液相色谱-串联质谱(ultra performance liquid chromatography-MS-MS,UPLC-MS/MS)检测腌腊肉中4种常用香料的方法。腌腊肉样品经甲酸-乙腈(体积比1∶999)溶液提取,无水硫酸钠、乙二胺-N-丙基硅烷和C18吸附剂净化,采用ZORBAX Eclipse Plus-C18反相色谱柱(100 mm×2.1 mm,1.8 μm)进行分离,流动相为乙腈-甲酸(体积比999∶1)水溶液,流速0.3 mL/min,柱温40 ℃,进样体积5.0 μL,电喷雾离子源电离,多反应监测模式采集信号,在正离子模式(ESI+)下完成定性定量分析。结果表明,4种香料在0.50~50 μg/L线性关系良好,相关系数(R2)均大于0.998;检出限(limit of detection,LOD)为0.5~5.0 μg/kg,定量限(limit of quantification,LOQ)为2.0~15.0 μg/kg。添加5、10、50 μg/kg 3个浓度水平,平均加标回收率为82%~103%,相对标准偏差(relative standard deviation,RSD)为1.6%~13.5%(n=6)。该方法简单快捷,回收率优良,灵敏度高,适用于腌腊肉样品中常用香料的检测。

关键词 超高效液相色谱-串联质谱;QuEChERS;香料;腌腊肉

腌腊肉制品是具有代表性的肉类菜肴,因其颜色、香气、味道和独特造型而具有一定的市场。风味是一个重要的感官指标,是影响消费者购买的决定性因素之一[1]。近年来,一些不良商贩为了赋予腌腊肉制品生动的原滋味,加强其中的香味[2-4],将食品增香剂如乙基麦芽酚、香兰素、甲基香兰素和乙基香兰素等大量使用在腌腊肉制品生产的各个领域。经欧盟专家委员会研究,大剂量食用香兰素可导致头痛、呼吸困难,甚至肝肾损伤;同时麦芽酚具有弱致突变活性和诱导细胞死亡的毒性作用[5]。腌腊肉作为传统饮食佳品,长期食用这些人工合成的香料会对人体造成潜在性危害,且目前缺少相应的检测标准,因此建立腌腊肉制品中香料的检测方法具有重要意义。

目前,针对香料检测的方法主要有电化学分析法[6]、比色法[7]、气相色谱法[8-10]、高效液相色谱法[11-12]及液相色谱-串联质谱法[13]等。电化学分析法特异性差、灵敏度低、定性能力较差;比色法操作比较繁杂,分析测得的结果往往偏高;液相色谱法和液相色谱-串联质谱法可用于大多数香料的分析,具有灵敏度高、抗干扰能力强等特点而被广泛应用。特别是超高效液相色谱-串联质谱法(ultra performance liquid chromatography-MS-MS,UPLC-MS/MS),因其具有选择性良好和检测通量大等优点,已成为痕量化合物分析的首选方法。张凯等[14]采用QuEChERS作为前处理技术,建立了QuEChERS-UPLC-MS/MS检测羊肉中8种抗真菌药的检测方法;曲宝成等[15]采用UPLC-MS/MS作为检测设备,建立植物油中香兰素、甲基香兰素和乙基香兰素的检测方法。目前,针对当前腌腊肉制品中香料物质检测技术缺失,缺乏相关检测标准。QuEChERS萃取作为一种样品前处理净化方法,具有“快速、简单、便宜、有效、稳定、安全”的特点[16-18],可用来分析畜禽肉类等物质中的痕量物质[19-20]

本研究以腌腊肉为研究对象,采用QuEChERS法对样品进行前处理,利用超高效液相色谱-串联质谱仪,建立测定腌腊肉制品中4种香料的分析方法,并对前处理基质效应和建立的方法进行方法学评价。为腌腊肉制品香料的质量控制提供一种更加快速、简便的检测方法,为食品安全监管提供技术支撑。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

腌腊肉样品购自贵阳市观山湖区农贸超市;甲醇、乙腈、乙酸乙酯(均为分析纯)、无水硫酸钠(分析纯),天津市科密欧化学试剂有限公司;乙腈(色谱纯),德国默克公司;乙基麦芽酚、香兰素、甲基香兰素、乙基香兰素标准品(纯度≥99%),德国Dr.Ehrenstorfer公司;十八烷基键合硅胶C18吸附剂(粒径40~63 μm)、乙二胺-N-丙基硅烷(primary secondary amine,PSA)吸附剂(粒径40~63 μm),上海安普实验科技股份有限公司。

1.2 仪器与设备

Agilent 1290/6470超高效液相色谱-串联质谱仪,美国安捷伦公司;GM200刀式研磨粉碎仪,德国Retsch公司;LT2002电子天平,常熟市天量仪器有限公司;UMV-2多管涡旋混合器,北京普立泰科仪器有限公司;L-550离心机,湖南湘仪离心机仪器有限公司。

1.3 标准溶液的配制

精密称取乙基麦芽酚、香兰素、甲基香兰素和乙基香兰素各10 mg(精确至0.1 mg),分别置于10 mL容量瓶中,用甲醇定容至刻度,摇匀,配制成质量浓度均为1 000 mg/L的标准储备液,于-18 ℃冰箱避光保存6个月。临用前用甲醇配制成质量浓度均为10 mg/L 的混合标准溶液,现配现用。

1.4 样品前处理

称取均质后的腌腊肉样品2 g(精确到0.01 g)于50 mL聚四氟乙烯离心管中,准确加入10 mL0.1%(体积分数)甲酸乙腈溶液,加入1粒陶瓷均质子,于多管旋涡混合器中涡旋振荡10 min,然后以4 500 r/min离心5 min。移取2 mL上清液于预先加有25 mg PSA吸附剂、25 mg C18吸附剂及500 mg无水硫酸钠的离心管中,涡旋振荡10 min,以4 500 r/min离心5 min。取出上清液,过0.22 μm 聚四氟乙烯滤膜,使用UPLC-MS/MS分析。

1.5 分析条件

1.5.1 色谱条件

色谱柱:ZORBAX Eclipse Plus-C18柱(100 mm×2.1 mm,1.8 μm);流动相A:0.1%(体积分数)甲酸水溶液;流动相B:乙腈;流速0.3 mL/min;柱温40 ℃;进样量5.0 μL;梯度洗脱程序:0~0.5 min(10% B),0.5~5 min(10%~40% B),5~7 min(40%~45% B),7~7.5 min(45%~90% B),7.5~8.0 min(90% B),8.0~8.5 min(90%~10% B),8.5~10 min(10% B)。

1.5.2 质谱条件

电喷雾离子源(ESI+),正离子扫描;多反应监测模式(multiple reaction monitoring,MRM);毛细管电压3.5 kV;雾化器压力45 psi;干燥气温度350 ℃;干燥气流速10 L/min;鞘气温度300 ℃;鞘气流速10 L/min;其他质谱参数见表1。

表1 四种香料的质谱参数
Table 1 Mass parameters of the four spices

化合物名称母离子(m/z)子离子(m/z)碰撞能量/eV锥孔电压/V保留时间离子模式乙基麦芽酚141125.9∗,70.822,34803.51+香兰素 153125.1∗,938,14703.95+乙基香兰素166.9111.1∗,93.212,22705.12+甲基香兰素166.9138.9∗,123.910,22705.14+

注:*为定量离子

1.6 数据处理及图表绘制

采用液相色谱-质谱联用仪的MassHunterB.07数据处理系统进行数据处理,采用SPSS 19.0、Microsoft Excel 2019和Origin 2018进行图表绘制。

2 结果与分析

2.1 色谱条件的优化

研究采用超高效液相色谱,选取100 mm×1.8 μm的超高压色谱柱对目标物进行梯度洗脱,此色谱可承受更高的压力,得出的峰形更好。实验进一步对流动相体系进行了对比,分别比较了甲醇-水(体积比1∶1)、甲醇-甲酸(体积比999∶1)水溶液、乙腈-水(体积比1∶1)、乙腈-甲酸(体积比999∶1)水溶液的流动相体系,实验结果表明,乙腈-甲酸(体积比999∶1)水溶液为流动相时,目标化合物的离子化效率较高,峰形较好,质谱响应最优。另外,研究还对25、30、40、50 ℃不同柱温进行了比较,结果表明,目标化合物的响应值在40 ℃时最好,因此确立了最佳色谱条件。图1是4种香料在此分析条件下的多反应监测色谱图。

图1 四种香料的多反应监测色谱图
Fig.1 MRM chromatogram of the four kinds spices

2.2 质谱条件的优化

4种香料物质在质谱上有比较强的正离子响应,实验将质量浓度为30 μg/L的乙基麦芽酚、香兰素、甲基香兰素和乙基香兰素4种香料标准溶液进行一级质谱扫描,分别得到其母离子,优化其锥孔电压。母离子通过碰撞气碰撞产生碎片离子进行二级质谱分析[21],同时优化锥孔电压,对得到的母离子进行子离子扫描,选择响应较好且稳定的2种碎片离子作为定性定量离子对。经过实验优化,本研究4种香料的质谱参数见表1。

2.3 样品前处理的优化

2.3.1 提取溶剂的优化

乙腈、甲醇作为提取溶剂,其极性范围宽,提取速度快,溶解作用强。乙酸乙酯的极性相对较弱,毒性较低。三者均是较为理想的提取溶剂。本研究针对腌腊肉样品,分别比较了乙腈、甲醇、乙酸乙酯、0.1%(体积分数,后同)甲酸-乙腈、0.1%甲酸-甲醇和0.1%甲酸-乙酸乙酯6种提取溶剂对4种目标化合物的提取效率。结果表明,乙酸乙酯对乙基麦芽酚和香兰素的提取效率不理想,增加0.1%甲酸后,含0.1%甲酸的乙酸乙酯对这2种化合物的提取效率仍无明显改善,可以看出,乙酸乙酯和0.1%甲酸-乙酸乙酯在乙基麦芽酚中的平均回收率差异不显著(P>0.05),平均回收率均小于20%,在香兰素中的平均回收率差异显著(P<0.05),平均回收率为49.07%、73.82%,但均小于80%。乙腈和0.1%甲酸-乙腈的提取效果明显高于甲醇和0.1%甲酸-甲醇,在4种香料中,乙腈、0.1%甲酸-乙腈与甲醇、0.1%甲酸-甲醇的平均回收率相差大,差异均显著,乙基麦芽酚(102.83%、105.51%、81.67%、83.65%,P<0.05)、香兰素(113.56%、118.64%、49.80%、59.18%,P<0.05)、甲基香兰素(107.70%、109.51%、63.72%、60.89%,P<0.05)、乙基香兰素(90.66%、92.56%、79.86%、85.17%,P<0.05),使用乙腈和0.1%甲酸-乙腈作为提取溶剂时,4种香料的平均回收率均大于90%,其中0.1%甲酸-乙腈的提取效率略高于乙腈(图2)。故选取0.1%甲酸乙腈作为提取溶剂。

图2 不同提取溶剂对腌腊肉样品中4种香料回收率的影响
(n=3)
Fig.2 Effects of different extraction solvents on the recoveries of
the four spices in cured meat samples(n=3)
注:图中不同字母表示不同香料间平均回收率差异
显著(P<0.05)(下同)

实验采用了涡旋振荡器对目标化合物进行提取。在此基础上,对涡旋振荡提取时间(5,10、15 min)进行了优化,结果表明,随着时间的增加,提取效率也逐步提升,在10 min提取效率达到最佳,10 min之后基本趋于稳定,故选取10 min作为最佳涡旋振荡提取时间。

2.3.2 净化方式的优化

腌腊肉样品中存在脂肪、色素、甾醇等杂质,要达到既能有效除去腌腊肉中杂质,又不会吸附目标物的目的,关键是吸附剂的选择。常见的QuEChERS 吸附材料有PSA、C18、石墨化炭黑(graphitized carbon black,GCB)等[22-24]。为了选择合适的吸附剂,研究对PSA、C18、PSA+C18及Oasis PRiME HLB固相萃取小柱进行了比较。结果表明,添加质量分数为500 μg/kg水平时,使用Oasis PRiME HLB固相萃取小柱净化,小柱内填料基本把香兰素目标物吸附,平均回收率接近40%,可以看出,香兰素和其他3种香料的平均回收率差异均显著(P<0.05)。使用单种吸附剂PSA、C18净化时,目标物损失较少,4种香料的平均回收率都在70%以上。其中,乙基麦芽酚PSA、C18平均回收率差异比较显著(P<0.05),PSA的平均回收率高于C18;香兰素PSA、C18平均回收率差异不显著(P>0.05),两者回收率均大于70%;在甲基香兰素和乙基香兰素中PSA、C18平均回收率差异均显著(P<0.05)。其中,净化效果最好的是PSA+C18混合吸附剂,平均回收率更高(图3),PSA含有2个氨基,可有效吸附糖类、色素、脂肪酸和其他极性有机酸,C18含有十八烷基官能团,属于非极性吸附剂,可以吸附脂肪和一些矿物质。PSA+C18混合吸附剂在4种香料中的平均回收率差异均显著,平均回收率差异较大,乙基麦芽酚(82.48%、98.28%、118.85%、113.55%,P<0.05)、香兰素(71.81%、72.68%、100.22%、36.50%,P<0.05)、甲基香兰素(102.40%、97.75%、116.89%、110.90%,P<0.05)、乙基香兰素(108.10%、102.85%、116.04%、104.83%,P<0.05)。因此,研究最终选用PSA+C18混合吸附剂作为样品的净化方式。

图3 不同净化方式对腌腊肉样品中4种香料回收率的影响
(n=3)
Fig.3 Effects of different purification methods on the recoveries of
the four spices in cured meat samples(n=3)

研究进一步对C18粉的用量(25、50、100 mg)和PSA吸附剂的用量(25、50、100 mg)进行了优化。结果表明,使用25 mg C18粉和25 mg PSA吸附剂时,净化效果最好,目标物损失最少。同时对无水硫酸钠的用量也进行了考察,确定其使用量为500 mg。综上,实验使用500 mg无水硫酸钠、25 mg C18粉和25 mg PSA吸附剂作为样品前处理方法。

2.4 方法学评价

2.4.1 基质效应

基质效应的计算参考相关文献[25-26],即基质效应=A/B。实验用空白样品提取液配制1 ng/mL的基质匹配标准溶液,得出空白样品基质中4种香料的响应值A;再用纯溶剂配制同浓度水平的混合标准溶液,得出纯溶剂中4种香料相同浓度的响应值B。若A/B>1,则表明基质增强效应;若A/B<1,则表明基质抑制效应;当A/B=1,则表明不存在基质效应。由表2可知,4种香料均存在着基质效应,香兰素表现为基质增强效应,乙基麦芽酚、甲基香兰素和乙基香兰素表现为基质抑制效应。基于此,为了消除基质效应的影响,实验采用基质匹配曲线对4种香料物质进行定量分析。

2.4.2 线性范围与检出限

在优化的条件下进行了方法学考察。配制4种香料的基质匹配标准溶液,质量浓度分别为0.5、5.0、10.0、20.0、30.0、50.0 μg/L,进样量5 μL,以MRM定量离子的峰面积(Y)对4种香料的质量浓度(X,μg/L)建立标准曲线,以峰面积相当于基线噪音的3倍(S/N=3)和10倍(S/N=10)计算样品的检出限(limit of detection,LOD)和定量限(limit of quantification,LOQ)。结果表明,4种香料在0.50~50 μg/L线性关系良好,相关系数(R2)均大于0.998,LOD为0.5~5.0 μg/kg,LOQ为2.0~15.0 μg/kg(表2)。

表2 腌腊肉中4种香料的线性方程、相关系数(R2)、
检出限、定量限和基质效应
Table 2 Linear equations, R2, LODs, LOQs and
matrix effects of the four spices in cured meat

化合物线性方程线性范围/(μg·L-1)R2LOD/(μg·kg-1)LOQ/(μg·kg-1)ME乙基麦芽酚Y=5 708.20X-2 912.380.50~500.998 5 0.5 2.0 0.10香兰素 Y=844.70X+116.020.50~500.999 3 5.0 15.0 2.04甲基香兰素Y=5 646.61X-4 098.420.50~500.999 0 2.0 5.0 0.23乙基香兰素Y=787.91X-314.640.50~500.999 1 2.0 5.5 0.31

2.5 回收率与精密度

向空白样品中准确加入4种香料的混合标准溶液,制备加标水平分别为5、10、50 μg/kg的样品各6份,按1.4步骤对样品进行前处理,并进行LC-MS/MS分析,基质匹配外标法定量,计算平均回收率和精密度。结果表明,腌腊肉样品中4种香料的平均加标回收率为82%~103%,精密度为1.6%~13.5%(表3)。

表3 三个加标水平下的平均回收率及精密度(n=6)
Table 3 Average recoveries and repeatabilities at three
spiked levels(n=6)

化合物5 μg/kg10 μg/kg50 μg/kg平均回收率/%相对标准偏差/%平均回收率/%相对标准偏差/%平均回收率/%相对标准偏差/%乙基麦芽酚102 8.6 927.2 1031.7香兰素 82 13.5 872.5 99 2.6甲基香兰素87 3.4 90 7.8 971.6乙基香兰素100 12.4 88 4.1 982.0

2.6 实际样品检测

应用建立的方法对购自市场上的60份腌腊肉样品进行分析检测,其中,3批次样品检出乙基麦芽酚,含量分别为3.77、5.25、8.36 μg/kg,其余样品均未检出目标化合物。

3 结论

本实验采用QuEChERS净化技术与液相色谱-串联质谱法相结合,建立了一种简便、快捷测定腌腊肉样品中4种常用香料的分析方法。研究通过优化QuEChERS方法的提取溶剂、提取方式、提取时间和净化材料,确立以0.1%甲酸-乙腈作为提取剂,涡旋振荡作为提取方式,10 min作为样品提取时间,以及500 mg无水硫酸钠、25 mg C18粉和25 mg PSA吸附剂作为样品净化材料。结果表明,4种香料质量浓度为0.50~50 μg/L时,相关系数均大于0.998,检出限为0.5~5.0 μg/kg,在5、10、50 μg/kg这3个添加水平,目标分析物的精密度均小于15%。该方法灵敏高效,回收率优良,重复性好,适用于腌腊肉样品中香料的检测,同时可为此类化合物检测标准的建立提供技术支撑。

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Determination of four spices in cured meat samples by QuEChERS coupled with ultra-performance liquid chomatography-tandem mass spectrometry

LI Linzhu1,MA Kai1,YANG Changbiao1,HUANG Yongqiao2,WANG Yuanyuan1,FAN Jinxu1,TAO Guangcan1*

1(Guizhou Academy of Testing and Analysis, Guiyang 550014, China)2(Guizhou Provincial Detection Technology Research and Application Center, Guiyang 550014, China)

ABSTRACT A method for simultaneous determination of four common spices in cured meat was developed using QuEChERS-ultra-performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry (UPLC-MS/MS). The sample was first shaken with a formic acid-acetonitrile solution (volume ratio of 1∶999) and then carried out purification by the QuEChERS . ZORBAX Eclipse Plus-C18 reversed-phase chromatography column (100 mm×2.1 mm, 1.8 μm) was used for separation, the mobile phase was acetonitrile-0.1% formic acid aqueous solution(volume ratio of 999∶1)with the flow rate 0.3 mL/min and the column temperature at 40 ℃. And the sample volume was 5.0 μL,qualitative and quantitative analysis were performed in ion mode (ESI+) and multiple reaction monitoring mode. The results showed that all the four spices showed a good linear trend in the range of 0.5-50 μg/L and the correlation coefficient (R2) was greater than 0.998. The limits of detection (LODs) and the limits of quantification (LOQs) were 0.5-5.0 μg/kg and 2.0-15.0 μg/kg, respectively. The average recoveries were 82%-103%, with relative standard deviations of 1.6%-13.5% (n=6). The developed method is easy, accurate and sensitive, which is suitable for the effective detection of common spices in cured meat samples.

Key words ultra-performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry;QuEChERS;spices;cured meat

DOI:10.13995/j.cnki.11-1802/ts.027529

引用格式:李林竹,马凯,杨昌彪,等.QuEChERS-超高效液相色谱-串联质谱法检测腌腊肉中四种常用香料[J].食品与发酵工业,2021,47(16):247-252.LI Linzhu,MA Kai,YANG Changbiao, et al.Determination of four spices in cured meat samples by QuEChERS coupled with ultra-performance liquid chomatography-tandem mass spectrometry[J].Food and Fermentation Industries,2021,47(16):247-252.

第一作者:硕士,助理工程师(陶光灿正高级工程师为通讯作者,E-mail:tgcan@gzata.cn)

基金项目:国家重点研发计划项目(2017YFC1601800);贵州省科技计划项目(黔科合平台人才[2018]5404);贵州省科技计划项目(黔科合重大专项字[2019]3011);贵州省科技计划项目(黔科合服企[2019]4001)

收稿日期:2021-04-06,改回日期:2021-04-21