气相色谱-电子捕获检测器法分析不同产地、不同香型白酒中活性羰基化合物

白酒是我国传统蒸馏酒，随着我国经济的高速发展，白酒产量和销量逐年增长。白酒发酵过程中产生的醛类化合物通常视为白酒中的呈香、呈味物质[1]，近年来，其中甲醛(formaldehyde, FOR)、乙醛(acetaldehyde, ACE)[2]、乙二醛(glyoxal, GO)、丙酮醛(methylglyoxal, MGO)、丙烯醛(acrolein, ACR)、巴豆醛(crotonaldehyde, CRO)、糠醛(furfural, FUR)[3]、5-羟甲基糠醛(5-hydroxymethylfurfural，5-HMF)、丙醛(propionaldehyde、PRO)、戊醛(valeraldehyde、VAL)、己醛(hexanal、HEX)、苯甲醛(benzaldehyde、BEN)和苯乙醛(phenylacetaldehyde、PHE)等小分子活泼羰基化合物对人体的危害引起医药、食品行业的高度重视[4]。活泼羰基化合物(reactive carbonyl species，RCS)能通过迈克尔加成反应(Michael addition reaction)或席夫碱反应(Schiff base reaction)与蛋白质、核酸、磷脂的亲核位点发生共价结合，导致细胞毒性和致突变性[5-6]。研究证明，RCS体内蓄积可导致癌症、神经退行性疾病、糖尿病并发症、阿尔茨海默症、衰老、动脉粥样硬化等多种疾病[7]。目前白酒中有害物质的研究主要集中在氨基甲酸乙酯[8]、生物胺[9]、氰化物[10]等，而对醛类的研究报道主要集中在FOR[11-12]和ACE[13-14]，多种RCS检测研究刚刚起步，如FUR[15]。因此，建立分析白酒中多种RCS检测方法，监控白酒加工过程及成品酒中含量，提高白酒的安全性，具有重要的现实意义。

目前，国外报道的酒类中RCS的检测方法有：采用高效液相色谱-荧光检测器检测葡萄酒[16-17]、酒精饮料[18]中的MGO和GO；气质联用技术检测葡萄酒[19]、啤酒[20]中的MGO、GO和ACR；采用气相色谱-氮磷检测器测定酒精饮料[21]中的MGO和GO，苹果酒中的ACR[22]；超高效液相质谱联用技术测定葡萄酒中5-HMF[23]；高效液相色谱-光电二极管阵列检测器分析葡萄汁、葡萄酒中5-HMF、FUR和2-糠酸[24]以及朗姆酒中的5-HMF和CRO[25]等其他醛和酯类。白酒生产工艺异于啤酒、葡萄酒，其成品中各类化合物组成、含量也大不相同，方法难以直接套用。迄今除质谱外，尚未有报道同时测定多种RCS的分析方法。采用质谱检测器，成本昂贵，操作难度相对较高，不易在企业和相关行业中推广普及[26-27]。相比而言，高效液相色谱-紫外分析方法简便、易于普及，不过衍生化试剂难以满足多种RCS的同步衍生化，实现同时分析多种RCS。因此，本文拟采用气相色谱法建立同时检测白酒中多种RCS的分析方法。

由于酒体中含有非常多的小分子挥发性物质，如：醇、醛以及各种酯类风味物质等，造成干扰，采用常规气相色谱分析方法难以一次性检出多种RCS。故本文采用衍生化方法，采用气相色谱-电子捕获检测器(gas chromatography-electron capture detector，GC-ECD)，旨在建立针对RCS分析的专属方法。方法运行过程中酒体中部分风味醛类也同时检出，故顺势一并进行了定量分析。而后采用该方法对国内市场白酒12种香型，9个产地100多种白酒样品进行了检测，统计学聚类分析了白酒中的7种RCS含量，本研究为检测白酒中存在的RCS含量提供了方法。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

ACR(98%)，萨恩化学技术(上海)有限公司；MGO、GO(40%)美国Sigma-Aldrich公司；CRO(99%)，Adamas-beta试剂；FUR(99%)、ACE(40%)，上海展云化工有限公司；FOR(100 mg/L)，生态环境部标准样品研究所；PRO(98%)、VAL(95%)、HEX(98%)、BEN(98%)、O-(2,3,4,5,6-五氟苄基)羟胺盐酸盐[O-(2,3,4,5,6-pentafluorobenzyl) hydroxylamine, PFBHA](98%)，日本TCI公司；PHE(95%)，阿法埃莎(中国)化学有限公司；1,2-二溴丙烷(98%)，上海安谱实验科技股份有限公司；以上均为质量分数；正己烷(色谱纯)，德国Merck公司；实验用水为超纯水；其余试剂均为国产分析纯。

实验用成品酒均通过市售或酒厂取样方式获得，12种香型酒样见表1。

1.2 仪器与设备

Agilent 6890 N 气相色谱仪(配有电子捕获检测器)、HP-5MS色谱柱(30 m×0.32 mm，0.25 μm)，美国Agilent公司；Thermo Biofuge Stratos超速冷冻离心机、Nanopure超纯水机，美国Thermo公司；Organomation N-EVAP 氮气吹干仪，美国Organomation公司；PWC 254型分析天平，英国ADAM公司。

1.3 实验方法

1.3.1 溶液的配制

1.3.1.1 标准储备液的配制

精确吸取适量ACR、MGO、GO、CRO、FUR、FOR、ACE、PRO、VAL、HEX、BEN和PHE标准品于100 mL棕色容量瓶中，加入乙腈溶解并定容后配制成质量浓度分别为0.03、0.03、0.03、0.12、0.6、0.03、3.0、0.12、0.12、0.3、0.12、0.12 mg/mL的标准品储备液，置于4 ℃条件下避光保存备用。

1.3.1.2 标准系列溶液的配制

精确吸取1.3.1.1中储备液适量于容量瓶中，用乙腈逐级稀释至标准系列溶液，其中ACR、MGO、GO和FOR质量浓度为0.005、0.01、0.02、0.05、0.1、0.25、 0.5、0.75 μg/mL，CRO、PRO、VAL、BEN和PHE质量浓度为0.02、0.04、0.08、0.2、0.4、1、2、3 μg/mL，HEX浓度为0.05、0.1、0.2、0.5、1、2.5、5、7.5 μg/mL，FUR质量浓度为0.1、0.2、0.4、1、2、5、10、15 μg/mL，ACE质量浓度为0.5、1、2、5、10、25、50、75 μg/mL。

1.3.1.3 衍生化试剂溶液的配制

精确称取MOREIRA等[18]适量于干燥的容量瓶中，加入超纯水溶解并定容后配制成质量浓度为5 mg/mL 的水溶液。

1.3.1.4 1,2-二溴丙烷溶液的配制

精确吸取1,2-二溴丙烷标准品适量于容量瓶中，加入正己烷溶解并定容后配制成质量浓度为1 mg/mL 1,2-二溴丙烷储备液，-10 ℃保存。临使用前精确吸取适量储备液于100 mL容量瓶中，加入正己烷溶解并定容后配制成质量浓度为0.5 μg/mL内标1,2-二溴丙烷溶液。

1.3.2 样品前处理

参考文献[28]的方法并进行优化，取适量白酒样品用超纯水将其酒精度(乙醇体积分数)稀释至10%，涡旋混匀，取出3 mL加入5 mg/mL PFBHA 1 mL[29]，盖紧试管塞，摇匀，于60 ℃摇床中避光反应1 h，反应结束后冷水冷却，加入50 μL浓硫酸，然后加入4 mL正己烷，涡旋3 min，静置5 min，取出正己烷层(上层)入10 mL玻璃管(含有3 mL0.2 mol/L 硫酸)中，涡旋30 s，静置5 min，取出正己烷层(上层)氮气吹干，300 μL正己烷复溶，用0.22 μm有机滤膜过滤，GC-ECD检测。

色谱柱：HP-5MS色谱柱；升温程序：50 ℃保持1 min，以4 ℃/min升至220 ℃，再以20 ℃/min升温至250 ℃，保持10 min；载气(N2)流速1 mL/min，压力34.2 kPa，进样量1 μL；不分流进样模式；进样口温度230 ℃，ECD检测器温度300 ℃。

1.4 数据统计及图表绘制方法

所有实验均平行3次，采用Excel 2010、SPSS 17.0分析实验数据，结果以

表示；利用R语言绘制层次聚类-热图。

2 结果与分析

2.1 色谱峰确立

由图1可知，通过对醛类物质共衍生化条件及色谱条件的优化，各待测物质在气相色谱中分离度良好，空白无杂质峰干扰，达到分析要求。

2.2 方法学考察

2.2.1 标准曲线、线性范围、检出限及定量限测定

取标准溶液按照1.3.2方法处理，按1.3.3条件进行GC-ECD分析。以质量浓度为横坐标x，以醛类化合物和内标峰面积比值为纵坐标y，分别绘制标准曲线并计算回归方程。根据信噪比确定检出限(limit of detection, LODs)(信噪比=3)以及定量限(limit of quantitation, LOQs)(信噪比=10)。如表2所示12种醛类化合物呈现良好的线性关系，相关系数在0.998以上，LODs和LOQs满足分析要求。

2.2.2 样品稳定性测定结果

将混合标准溶液按1.3.2中的方法处理后，分别4 ℃ 避光放置0、1、2、4、8、16、24 h后在1.3.3中的色谱条件下测定各醛类化合物和内标的峰面积，ACR、MGO、GO、CRO、FUR、FOR、ACE、PRO、VAL、HEX、BEN、PHE衍生物与内标峰面积比值的相对标准偏差(relative standard deviation, RSD)分别为1.18%、2.69%、 1.98%、0.47%、3.70%、1.20%、1.56%、0.61%、 1.94%、1.93%、2.94%、0.62%，结果表明衍生化后样品溶液在24 h内稳定性良好。

2.2.3 加标回收率和精密度测定结果

向已知12种醛类化合物的白酒样品中分别加入高、中、低3个质量浓度水平的混合标准溶液，混合均匀后将样品酒精度稀释至10%，取3 mL按1.3.2方法处理，每个加标水平平行做6次实验，计算相应组分的加标回收率和RSD，结果见表3。12种醛类化合物平均加标回收率为86.98%～109.55%，RSD均<5%，表明该方法精密度良好，准确度高。

综上所述，我们采用常用色谱GC-ECD，通过衍生化，建立一种同时定量测定多种RCS (ACR/MGO/GO/CRO/FUR/FRO/ACE)以及风味醛类物质(PRO/VAL/HEX/BEN/PHE)共12种醛类的方法，由此，在没有质谱条件下，采用GC同样可以一次性检测白酒中的风险因子和风味物质等多种醛类。GC成本低，方法简单，稳定性高，能达到较高的精密度和准确度，易于在行业中推广使用。在此基础上，我们对不同香型不同产地的白酒进行了全面分析。

2.3 不同香型成品酒中醛类化合物的分析

不同香型的白酒配料、酒曲、生产工艺、发酵温度、产地等各不相同，根据主体香气成分可分为酱香型、浓香型、清香型、兼香型、米香型、凤香型、芝麻香型、豉香型、特香型、药香型、老白干香型、馥郁香型共12种香型[30]。每种香型选取5种酒样，共定量检测出FRO、ACE、GO、MGO、ACR、CRO、FUR、5-HMF、PRO、VAL、HEX、BEN、PHE 12种醛类物质，与之前的报道相似[31]。由表4可知，酱香型白酒中12种醛类物质总含量最高，芝麻香型次之，豉香型最少；丁醛、VAL、HEX的含量均处于国家标准允许的安全范围[32]，其余醛类无国家标准规定。

基于ACR、MGO、GO、CRO、FUR、FOR和ACE 7种RCS含量绘制热图，并对12个香型进行聚类分析。如图2所示，12个香型可归为两大类，第Ⅰ大类包括酱香型和芝麻香型，ACR、MGO、GO、CRO、FUR、FOR和ACE均相对较高，其中GO、CRO、FUR和ACE含量最高，国内已有文献报道芝麻香型酒中ACE含量最高，酱香型次之[13-14]；可能是酱香型白酒和芝麻香型白酒均采用高温发酵的生产工艺，酱香型采用高温制曲、高温堆积、高温发酵、高温馏酒，其生产周期长，贮藏时间长；芝麻香型白酒采用高氮配料、高温堆积、高温发酵、高温馏酒[33-34]，而较高的温度和高氮配料均有利于美拉德反应进行，已有大量文献报道RCS来源于美拉德反应或部分微生物发酵过程。因此，有必要对酒配料和发酵过程中RCS的形成进一步研究。其余香型可归为第Ⅱ大类。其中，药香型因其ACR含量较高而聚集，药香型白酒采用百草入曲，大、小曲发酵，双醅串蒸，偏碱性筑窑材料，究竟是哪种因素导致ACR含量增高尚需对各种因素综合分析研究。相比而言药香型的其他醛类含量明显较低。凤香型因其FOR含量较高而聚集。豉香型因其GO，ACR含量高而聚集，豉香型白酒在加工工艺会将酒泵入浸肉池，肥肉酝浸多天，而肥肉富含油脂。大量文献报道油脂氧化过程中会产生GO、ACR等[35]，这可能是导致酒体中RCS含量增高的原因。老白干香型白酒3种聚类中，7种RCS含量均较低。清香型和特香型白酒中，RCS含量均较低，其中ACR含量最低。馥郁香型白酒除FUR略高，其他RCS含量均较低。浓香型白酒未能聚类，不同样品中7种RCS含量各不相同，反复抽取多种样品实验均未果。酒厂内容调研发现，浓香型白酒基酒存在异地采购勾兑而成现象。是否由于基酒不同造成的影响而不能聚类，有待进一步研究。

2.4 不同产地成品酒中醛类化合物的分析

各类白酒差异性不仅归因于不同的加工工艺，其地域差异性导致气候、温湿度、水质、发酵微生物等因素也会影响白酒质量。白酒按产区可大致分为6大板块，分别为川黔板块、苏皖板块、鲁豫板块、两湖板块、东北板块和华北板块。本实验初步考察了9个产地的不同成品酒含量，其中RCS采用统计学方法，如表5所示。基于ACR、MGO、GO、CRO、FUR、FOR和ACE 7种RCS含量绘制热图，并对9个产地进行聚类分析。如图3所示，9个产地可归为2大类。贵州单独为Ⅰ类，7种RCS含量均较高，MGO、GO、CRO、FUR和ACE含量最高。四川、湖南、河北、广东，7种RCS含量总和略低，除少数GO含量较高，其余几种RCS含量均较低。江苏和陕西FOR含量较高，其余几种RCS含量略高。此外，贵州、湖南、河北、广东、陕西3个样品完全聚类，四川、山西、江苏其2个样品也能聚类，安徽3个样品各不相同，无法聚类。

3 结论

本文建立了一种同时检测白酒中ACR、MGO、GO、CRO、FUR、FOR、ACE、PRO、VAL、HEX、BEN和PHE共12种醛类的GC-ECD分析方法。该方法LODs为0.3～2.0 ng/mL，LOQs为0.9～6.0 ng/mL，回收率86.98%～109.55%，方法的精密度高、稳定性好，灵敏度高，操作简便易行。采用统计学聚类分析法分析了12种香型、9个产地白酒中RCS含量。结果表明，不同香型白酒中7种RCS差异明显，其中酱香型和芝麻香型白酒中RCS含量较高。不同产地对RCS的影响也较为明显。贵州地区生产的白酒中RCS含量较高。而由于白酒配方迥异、加工工艺复杂，水质、气候、微生物等影响因素众多，导致酒体RCS含量高的原因尚需针对具体加工工艺进一步深入研究。

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