香茅精油处理对马铃薯的抑芽作用研究

袁丽雪1,赵愉涵1,孙斐1,韩聪1,闫琰2,李丹2,部建雯2,陈庆敏2*,傅茂润1*

1(齐鲁工业大学(山东省科学院) 食品科学与工程学院,山东 济南,250353)2(山东农业工程学院 食品科学与工程学院,山东 济南,250100)

摘 要 为探究出一种绿色安全的马铃薯抑芽方法,以“V7”马铃薯为试验材料,采用1.0 mL/kg(以马铃薯实际质量计)剂量的香茅精油处理马铃薯块茎,在常温下(25 ℃)贮藏20 d。每隔4 d取样观察马铃薯块茎发芽形态,并测定发芽率、发芽指数、糖代谢、蛋白质代谢相关指标。结果表明,香茅精油可有效抑制马铃薯块茎发芽,贮藏结束时,发芽率和发芽指数分别为15.00%和4.29%,而对照分别是100.00%和30.00%,达到显著差异水平(P<0.05)。贮藏期间,香茅精油处理可影响马铃薯呼吸强度,减缓淀粉、还原糖、总糖、可溶性蛋白质含量的下降,抑制了还原糖的积累,总蛋白含量变化较小,对果糖和葡萄糖的影响小,但加快了蔗糖的降解速度。结果表明,香茅精油有良好的抑芽效果,香茅精油对糖代谢的影响较大,而对蛋白质代谢的影响较小,但其具体的生理生化及分子机制还需进一步研究。

关键词 马铃薯;香茅精油;抑芽作用;糖代谢

马铃薯(Solanum tuberosum L.)是茄科属一年生草本植物,种植周期短,单产收获高,营养物质丰富,干物质含量约为20%,含量最多的是淀粉,除此之外还含有蛋白质、脂肪、粗纤维、矿物质及维生素等[1]。2015年农业部提出马铃薯主粮化战略,将马铃薯列为第四大主粮进行推广,扩大种植面积并提高亩产量[2]。采后的马铃薯块茎会进入休眠状态,此时营养物质消耗极少,当休眠状态被打破时,马铃薯块茎随即发芽[3]。发芽会引起马铃薯营养成分流失、腐烂变绿,并产生龙葵素等有毒物质,从而造成马铃薯商品品质下降,以及巨大的食用安全隐患。因此,有效抑制马铃薯块茎发芽成为亟待解决的问题。

目前抑制马铃薯发芽的方法有低温贮藏、辐射处理、化学抑制剂等。在低温贮藏过程中,淀粉转化分解为还原糖,导致还原糖迅速聚集累积[4]。在油炸加工时,易生成带有苦味的褐色物质,严重影响马铃薯的色泽和品质,并导致丙烯酰胺等致癌物质生成。辐射处理的作用是不可逆的,不适用于种薯,且运输成本大、设备要求高,消费者的安全顾虑多。常见的化学抑制剂有氯苯胺灵、青鲜素、α-萘乙酸甲酯等[5],抑芽效果好且成本低,在马铃薯贮藏产业广泛应用,但青鲜素和α-萘乙酸甲酯对人体有致癌作用,在食用后存在一定的安全隐患;氯苯胺灵的降解产物如3-氯苯胺和苯胺基衍生物会产生某些致癌物质[6],引发一系列健康风险和安全问题。随着人们对农药残留和食品安全的重视,氯苯胺灵的可接受度在下降,我国食品安全国家标准规定氯苯胺灵在马铃薯上的最大残留限量为30 mg/kg。因此寻找氯苯胺灵等化学抑芽剂的替代品,开发绿色安全高效的马铃薯新型抑芽剂,是马铃薯贮藏加工业亟待解决的问题。

植物精油主要含有萜类、醇类、醛类、酸类、酚类、芳香族化合物类等[7],具有抑菌、抗病毒、抗氧化等生理作用[8],因而被广泛应用于食品、香料、医药、化妆品领域。已有研究表明,薄荷、葛缕子、莳萝、留兰香、茉莉、百里香、肉桂等植物精油[9-12]对马铃薯的发芽具有明显的抑制作用。香茅是一种常见的香料,具有抗菌消炎、驱蚊避虫、和胃通气、提神醒脑等作用[13],被广泛应用于医药、日化等领域,其安全性得到证实,而香茅精油(citronella essential oil,CEO)对于马铃薯的抑芽作用还未见报道。

本文采用香茅精油处理马铃薯块茎,研究香茅精油对马铃薯贮藏期间的抑芽效果,从呼吸强度、糖代谢、蛋白质变化角度探究抑芽作用机理,以期为开发马铃薯的采后抑芽提供新的选择。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

马铃薯“V7”,2021年4月购自山东省济南市槐荫区山东匡山农产品综合交易市场(已过休眠期)。香茅精油购自重庆芳黛化妆品商行。

碘、葡萄糖、NaOH、3,5-二硝基水杨酸、K2SO4,国药集团化学试剂有限公司;KI、Na2SO3,天津博迪化工股份有限公司;可溶性淀粉、酒石酸钾钠、CuSO4、甲基红、溴甲酚绿、硼酸,天津大茂化学试剂厂;Na2SO4,天津广成化学试剂有限公司;苯酚,西陇科学股份有限公司;牛血清蛋白质,广州浩玛生物科技有限公司;石油醚、乙醇,天津富宇精细化工有限公司;考马斯亮蓝G-250、葡萄糖、果糖、蔗糖,上海源叶生物有限公司;浓硫酸(浓度98%),烟台远东精细化工有限公司;乙腈,上海星可高纯溶剂有限公司。

1.2 仪器与设备

YGA2100型气体测定仪,北京阳光亿事达科技有限公司;V-1100D 紫外可见分光光度计,上海美谱达仪器有限公司;ME104型电子分析天平,上海梅特勒-托利多仪器有限公司;XW-80A旋涡混合器,海门其林贝尔仪器制造有限公司;H1805R台式高速冷冻离心机,长沙湘仪离心机有限公司;RE-52AA旋转蒸发仪,上海亚荣生化仪器厂;LC-20AT HPLC仪器,日本岛津仪器有限公司;K9860全自动凯氏定氮仪、SH220F石墨消解仪,山东海能科学仪器有限公司。

1.3 样品处理方法

在正式实验之前,分别就香茅精油浓度和熏蒸方式进行预实验,选择香茅精油处理剂量0.5、1.0、2.0 mL/kg(以每筐马铃薯的质量计,每筐约1.5 kg),熏蒸方式选择直接熏蒸、滤纸熏蒸、混土熏蒸。马铃薯购买后运回实验室,对马铃薯块茎进行筛选,除去有机械损伤和病虫害的马铃薯,随后将马铃薯分装到10 L塑料筐中。(1)直接熏蒸法:把香茅精油添加到培养皿中,放置于塑料筐中心密闭熏蒸。(2)滤纸熏蒸法:用移液枪将香茅精油滴加在滤纸上,滤纸粘贴于塑料筐外侧密闭熏蒸。(3)混土熏蒸法:参考氯苯胺灵(马铃薯抑芽剂)的使用方法,以每筐马铃薯具体质量计,选择不同的香茅精油处理剂量(0.5、1.0、2.0 mL/kg)处理马铃薯,将一定量香茅精油与无菌土(300 g,于121 ℃灭菌30 min)混匀,均匀覆盖在马铃薯表面,用聚乙烯保鲜袋封口密闭熏蒸。定期测量芽长,统计发芽率。结果发现,混土熏蒸的抑芽效果最佳。对于香茅精油处理剂量(0.5、1.0、2.0 mL/kg)来说,随处理浓度上升马铃薯的发芽率逐渐下降,因此本试验采用混土熏蒸方式,选定1.0 mL/kg的质量浓度用于正式实验。

将筛选后无机械损伤、无病虫害的马铃薯分装到10 L塑料筐中,每组6筐,每筐马铃薯10个(约1.5 kg)。其中3筐马铃薯用来测定发芽率、发芽指数、呼吸强度,另外3筐取样后立即保存用于测定其他指标。采用混土熏蒸方式,香茅精油处理剂量为1.0 mL/kg(以每筐马铃薯具体质量计),将一定量香茅精油与无菌土(300 g,于121 ℃灭菌30 min)混匀,均匀覆盖于马铃薯表面,同时设置空白对照。然后将上述各处理组用厚度为0.03 mm的聚乙烯保鲜袋密封,于常温下(25 ℃)贮藏20 d,其中在贮藏24 h时将聚乙烯保鲜袋的4个角分别戳孔,便于马铃薯进行气体交换。

每4 d测定发芽率、发芽指数、呼吸强度。每4 d采用随机取样的方法进行取样,具体取样方法为:用打孔器沿马铃薯块茎顶部至基部方向打孔取样2次,然后垂直于上述方向再取样2次,取样后切成厚度3 mm左右的薄片混匀,液氮冷冻后放入-80 ℃冰箱储存待用。

1.4 指标的测定

1.4.1 发芽率及发芽指数的测定

每个处理随机选取5个马铃薯,记录每个块茎上的芽数并用游标卡尺测量最长芽的长度,均取平均值。发芽指数参照涂勇等[12]的方法,芽长共分8级(表1),芽长小于2 mm视为未萌动或处于萌动状态,判定为未发芽。

表1 发芽分级标准
Table 1 Germination classification standards

芽长/mm发芽等级芽长/mm发芽等级0~2015~2042~5120~2555~10225~30610~153>307

发芽率和发芽指数按照公式(1)(2)计算:

发芽率

(1)

发芽指数

(2)

1.4.2 呼吸强度测定

参考梁芸志等[14]方法,采用气体分析仪测定。随机选择5个马铃薯,放入体积为10 L的塑料筐中密闭1.5 h,记录CO2百分含量。呼吸强度以mg CO2/(kg·h)表示。

1.4.3 淀粉含量测定

参照曹建康等[15]的方法并做修改,采用碘-淀粉比色法。称取2.0 g马铃薯样品置于研钵中,加入30 mL石油醚和乙醇充分研磨、过滤,将滤渣转移至烧杯中,于沸水浴中加热、搅拌,直至淀粉完全糊化为澄清透明溶液。将上述溶液转移至100 mL容量瓶中,定容。淀粉含量按照公式(3)计算:

淀粉含量

(3)

式中:m′,标准曲线中的淀粉质量,μg;V,提取液总体积,mL;N,样品稀释倍数;Vs,测定时吸取样品的体积,mL;m,样品质量,g。

1.4.4 还原糖含量测定

参照HU等[16]的方法,采用3,5-二硝基水杨酸法测定。称取1.0 g马铃薯样品,用50 L蒸馏水洗入三角瓶中,混匀后置于50 ℃水浴锅中保温30 min,待匀浆冷却后过滤,滤液转移至100 mL容量瓶并定容。在波长540 nm处测定溶液的吸光度。还原糖含量按照公式(4)计算:

还原糖含量

(4)

式中:m′,标准曲线中的葡萄糖质量,μg;V,提取液总体积,mL;N,样品稀释倍数;Vs,测定时吸取样品的体积,mL;m,样品质量,g。

1.4.5 总糖含量测定

称取5.0 g马铃薯样品并加入10 mL 6 mol/L HCl溶液进行研磨,研磨后加入15 mL水置于沸水浴中煮沸30 min,取出冷却后加入1滴酚酞指示剂,以质量浓度100 g/L的NaOH溶液中和使溶液呈微红色,然后转移至100 mL容量瓶并定容。测定步骤及计算方法同1.4.4。

1.4.6 糖组分的测定

葡萄糖、果糖和蔗糖的提取和测定参照TERRY等[17]的方法并修改。称取1.5 g马铃薯样品于研钵中,加入20 mL 80%的乙醇充分研磨,然后转移至烧杯中超声波提取30 min,过滤后,将上清液在旋转蒸发仪中蒸干(温度设定为60 ℃)。残留物用10 mL的V(乙腈)∶V(水)=80∶20溶液溶解,置于4 ℃冰箱保存待用。提取液用0.45 μm滤膜过滤,然后用HPLC测定。其中色谱柱为NH2(5 μm,250 mm×4.6 mm),柱温30 ℃,进样量20 μL,检测器为RID-10A(温度40 ℃),流动相为乙腈和水(体积比80∶20),流速为1.0 mL/min。

1.4.7 总蛋白含量测定

马铃薯样品消解2 h后,采用凯氏定氮法测定[18],首先对仪器管路进行清洗,然后输入硫酸标准溶液的浓度以及蛋白质换算系数,待空白测试数值稳定后进行样品总蛋白含量测定,并记录全自动凯氏定氮仪的读数,总蛋白含量以%表示。

1.4.8 可溶性蛋白质含量测定

参照曹建康等[15]的方法,采用考马斯亮蓝染色法,测定在595 nm处溶液的吸光度。利用标准曲线计算马铃薯样品中的可溶性蛋白质含量,其中标准曲线为:y=0.002 9x+0.016 4(x表示蛋白质质量,y表示吸光值),R2=0.998 7。

1.5 数据分析

每种样品设置3个平行,使用Excel 2010软件绘制图表,用SPSS 23.0软件进行差异显著性分析,结果以平均值±标准差表示,采用方差分析进行邓肯氏检验,以P<0.05表示差异显著。

2 结果分析

2.1 香茅精油处理对马铃薯块茎发芽形态的影响

CEO处理对马铃薯贮藏期间块茎发芽形态的影响如图1所示。以第0天未处理的马铃薯块茎为对照,在贮藏20 d时,对照组的马铃薯块茎发芽数较多,主要聚集在顶芽周围呈现簇拥状态,在块茎侧身也有一定的萌芽现象,顶芽表现为紫色或绿色而侧芽为黄色。处理组的马铃薯块茎几乎未发芽,发芽的块茎主要集中在顶芽,芽眼部位呈现黑色。

图1 香茅精油处理对马铃薯块茎萌芽的影响
Fig.1 Effect of citronella essential oil treatment
on potato tuber sprout

2.2 香茅精油处理对马铃薯发芽率和发芽指数的影响

发芽率和发芽指数与马铃薯的品质息息相关,发芽后马铃薯营养成分流失,外观和食用品质大幅下降。由图2可知,在贮藏第4天时,对照组的发芽率为25.00%,发芽指数为2.86%,此时香茅精油处理组尚未发芽。对照组的发芽率和发芽指数从贮藏第4天开始,呈现迅速上升趋势,处理组的发芽率和发芽指数始终显著低于对照组(P<0.05)。贮藏结束时,处理组的发芽率和发芽指数分别为15.00%和4.29%,而对照分别是100.00%和30.00%。因此,香茅精油处理可以有效延缓马铃薯发芽,将发芽率和发芽指数维持在较低水平。

a-发芽率;b-发芽指数
图2 香茅精油处理对马铃薯发芽率、发芽指数的影响
Fig.2 Effect of citronella essential oil treatment on potato
germination rate and germination index

2.3 香茅精油处理对马铃薯呼吸强度的影响

呼吸强度是反映植物新陈代谢和生命活动强弱的重要指标。马铃薯在感染病害或受伤情况下呼吸强度明显增加[19],马铃薯从市场购买运回实验室途中受到机械损伤,所以贮藏初期2组马铃薯呼吸强度最高[48.81 mg/(kg·h)](图3)。贮藏第4天和第8天时,处理组的马铃薯呼吸强度均高于对照组,二者差异达到显著水平(P<0.05)。随后2组马铃薯块茎呼吸强度均呈现下降趋势,贮藏16 d至贮藏期结束,香茅精油处理组呼吸强度上升,因为此时是处理组块茎萌芽时期。因此,贮藏初期香茅精油处理会使马铃薯块茎呼吸强度保持较高水平,而伤口愈合后又迅速下降,香茅精油处理在贮藏后期可抑制马铃薯的呼吸强度。

图3 香茅精油处理对马铃薯呼吸强度的影响
Fig.3 Effect of citronella essential oil treatment
on potato respiratory strength

2.4 香茅精油处理对马铃薯淀粉含量的影响

淀粉是马铃薯块茎的主要营养物质和能量来源[20],淀粉含量的高低可以反映马铃薯贮藏品质的变化。淀粉与糖的转换在贮藏期间一直存在,始终遵循淀粉和还原糖的可逆动态平衡[21]。如图4所示,对照组和处理组的马铃薯淀粉含量在贮藏期间处于波动状态。从贮藏第12天至贮藏结束,二者的淀粉含量变化趋势相同,且处理组的淀粉含量始终高于对照组,达到显著水平(P<0.05)。贮藏第20天时,对照组和处理组的淀粉含量分别为11.81%、14.65%,分别为初始值的73.9%、91.6%,这表明,香茅精油处理可有效延缓淀粉含量的下降,更有利于保持贮藏过程中马铃薯品质。

图4 香茅精油处理对马铃薯淀粉含量的影响
Fig.4 Effect of citronella essential oil treatment
on potato starch content

2.5 香茅精油处理对马铃薯总糖和还原糖含量的影响

糖是马铃薯呼吸作用的主要底物,也是重要的能量储存物质,马铃薯采后一切生命活动所需能量都由糖类提供。还原糖含量是衡量马铃薯贮藏品质的重要指标,还原糖包括葡萄糖、果糖、乳糖、麦芽糖等。还原糖会与氨基酸发生美拉德反应,产生棕色带苦味的物质[22],因此马铃薯中过高的还原糖会影响马铃薯油炸食品的色泽和品质。

整体来看,处理组的马铃薯总糖含量在贮藏期始终高于对照组,且在第4天和第12天达到显著水平(P<0.05)(图5-a)。贮藏20 d时,处理组和对照组的总糖含量分别为403.43、385.52 mg/g,与初始值相比分别下降了7.63%和9.18%。说明香茅精油处理可以减少总糖的消耗,使总糖含量保持在较高水平。如图5-b所示,在贮藏期开始,马铃薯的还原糖含量最高(139.65 mg/g),随着贮藏时间延长,2组还原糖含量均呈下降趋势,这是因为马铃薯脱离冷库后,由于温度升高,马铃薯呼吸作用加强以及糖逆转化为淀粉,导致累积的还原糖含量逐步下降,这与司怀军等[23]研究结果一致。贮藏结束时,对照组和处理组的还原糖含量分别为53.60、36.09 mg/g,差异达到显著水平(P<0.05)。说明香茅精油处理可以抑制还原糖的产生速率,使马铃薯块茎的还原糖含量保持在较低水平,从而减轻美拉德反应导致的品质和色泽变化。由于马铃薯总糖含量受还原糖含量影响,贮藏期间还原糖含量不断被消耗,导致总糖含量也有一定消耗。

a-总糖;b-还原糖
图5 香茅精油处理对马铃薯总糖和还原糖含量的影响
Fig.5 Effect of citronella essential oil treatment on potato
total sugar and reduced sugar content

2.6 香茅精油处理对马铃薯糖组分的影响

在贮藏期间,对照组和处理组果糖和葡萄糖含量略有下降,而蔗糖含量则明显下降。如图6所示。

a-果糖;b-葡萄糖;c-蔗糖
图6 香茅精油处理对马铃薯果糖、葡萄糖、蔗糖含量的影响
Fig.6 Effects of citronella essential oil treatment on potato fructose, glucose and sucrose content

在贮藏第8天至第16天,处理组和对照组间马铃薯果糖含量有显著差异(P<0.05),各组间葡萄糖含量仅在贮藏第8天时达到显著性差异(P<0.05)。贮藏第8天时,处理组的果糖、葡萄糖含量显著高于对照组,而处理组淀粉含量低于对照组,这说明在香茅精油作用下,马铃薯块茎内淀粉转化为蔗糖,进而在液泡转化酶作用下生成大量果糖和葡萄糖,导致果糖、葡萄糖含量高于对照组(图7)。对于蔗糖来说,在贮藏第12天,处理组蔗糖含量显著高于对照组(P<0.05)(图6-c),而此时处理组葡萄糖、果糖含量低于对照组,可能是蔗糖在液泡转化酶抑制剂作用下,合成果糖和葡萄糖路径受阻,导致蔗糖被积累(图7)。

2.7 香茅精油处理对马铃薯总蛋白和可溶性蛋白含量的影响

蛋白质代谢是马铃薯块茎生命活动的基础,马铃薯萌芽时,贮藏蛋白质在各种酶的作用下降解为小分子氨基酸,为新蛋白质和其他代谢物质合成提供基础[24]。可溶性蛋白质是果蔬细胞中酶体系的重要构成部分,参与多种生理代谢过程,可溶性蛋白质的含量与果蔬细胞的成熟衰老密不可分[25]

总体来说,处理组以及对照组的总蛋白含量在贮藏期间变化较平稳,呈现缓慢下降趋势(图8-a)。仅在贮藏第8天时,2组间的马铃薯总蛋白含量有显著差异(P<0.05),贮藏结束时(20 d),对照组和处理组的总蛋白含量分别为1.81%和1.79%。如图8-b所示,在贮藏期间,对照组以及处理组的可溶性蛋白质的含量均呈现先上升后下降趋势。从贮藏12 d至贮藏结束,2组间可溶性蛋白质含量具有显著差异(P<0.05)。贮藏结束时(20 d),香茅精油处理组的马铃薯可溶性蛋白质含量比对照组高11.82%。结果表明,在贮藏过程中,2组马铃薯总蛋白含量都保持稳定,香茅精油处理对总蛋白的影响不大,而对马铃薯可溶性蛋白质含量的下降有抑制作用。

SP-淀粉磷酸化酶;AGPase-腺苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶;SS-淀粉合成酶;UGPase-尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶;
SuSy-蔗糖合成酶;VI-液泡转化酶;INH-液泡转化酶抑制剂;PPP-磷酸戊糖途径;EMP-糖酵解
图7 碳水化合物代谢路径[26]
Fig.7 Carbohydrate metabolic pathways

a-总蛋白质;b-可溶性蛋白质
图8 香茅精油处理对马铃薯总蛋白质和可溶性
蛋白质含量的影响
Fig.8 Effect of citronella essential oil treatment on potato
total protein and soluble protein content

3 讨论与结论

采后香茅精油处理能有效抑制马铃薯发芽,贮藏第20天时,马铃薯的发芽率和发芽指数分别为15.00%和4.29%,而对照组为100.00%和30.00%。香茅精油使马铃薯块茎芽眼部分呈现黑色,在萌芽阶段破坏芽组织,延缓发芽时间。品质方面,香茅精油处理延缓了淀粉、可溶性蛋白质含量的下降,贮藏结束时,有效保持了马铃薯块茎的营养成分。香茅精油处理降低了还原糖的产生速率,减少还原糖的积累,使马铃薯在后续加工期间保持良好的色泽和品质。

马铃薯块茎萌芽需要能量,而这些能量大部分是由淀粉降解产生的。在马铃薯贮藏过程中,淀粉与还原糖遵循着可逆动态平衡,淀粉在淀粉磷酸化酶(starch phosphorylase,SP)作用下生成葡萄糖,经一系列反应最终形成蔗糖。蔗糖在蔗糖合成酶(sucrose synthase,SuSy)、尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶(UDP glucose pyrophosphorylase,UGPase)、腺苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶(ADP glucose pyrophosphorylase,AGPase)、淀粉合成酶(starch synthase,SS)作用下重新形成淀粉。除此之外,蔗糖在液泡转化酶作用下重新生成果糖和葡萄糖。香茅精油处理可减少总糖的消耗,使总糖保持较高的水平,贮藏结束时下降了7.63%。香茅精油处理延缓了马铃薯淀粉含量的下降,抑制了还原糖的产生速率,使还原糖含量保持在较低水平。对于糖组分来说,果糖和葡萄糖含量处于动态变化,总体来说呈现缓慢下降趋势,而蔗糖含量的下降趋势较明显,说明香茅精油明显加快了蔗糖的降解速度。

马铃薯块茎的休眠状态被打破后,蛋白质开始分解为氨基酸,以支持芽的发育和生长。LIU等[27]研究发现,差异表达蛋白质随着分生组织的再次生长而发生转移,最终导致马铃薯块茎休眠被打破。对于总蛋白和可溶性蛋白质来说,香茅精油处理可以维持总蛋白含量稳定,减少马铃薯总蛋白消耗;处理组可溶性蛋白质含量在贮藏期结束时仍高于对照组,这表明香茅精油处理可以减缓可溶性蛋白质的消耗,延缓马铃薯衰老进程。本试验发现,香茅精油处理在贮藏前期使马铃薯块茎呼吸强度保持较高水平,伤口愈合后又迅速下降,并在贮藏后期抑制了马铃薯呼吸强度。

综上所述,香茅精油作为一种天然植物成分,除了具有良好的抑芽效果,还可使马铃薯保持良好的商品价值,这为开发新型安全马铃薯抑芽剂提供了新的选择。另外,马铃薯萌芽过程中,香茅精油对糖代谢的影响较大,而对蛋白质代谢的影响较小,但其具体的生理生化及分子机制还需进一步研究。

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Inhibition effect of citronella essential oil on potato tuber sprout

YUAN Lixue1, ZHAO Yuhan1, SUN Fei1, HAN Cong1, YAN Yan2, LI Dan2,BU Jianwen2, CHEN Qingmin2*, FU Maorun1*

1(College of Food Science and Engineering, Qilu University of Technology (Shandong Academy of Sciences), Jinan 250353, China)2(College of Food Science and Engineering, Shandong Agricultural Engineering University, Jinan 250100, China)

ABSTRACT To explore the inhibition effect of the citronella essential oil on potatoes tubers sprout, the “V7” potato variety was used as materials, treated by 1.0 mL/kg (based on the actual weight of the potato) of citronella essential oil and stored at room temperature (25 ℃) for 20 days. The germination morphology of the potato tuber was observed at 4 days intervals, and the germination rate, germination index, sugar metabolism, and protein metabolism were measured. Results showed that citronella essential oil (CEO) could effectively inhibit the germination of potato tubers. At the end of storage, the germination rate and germination indexes of the treated group were 15.00% and 4.29%, which had a significant difference level compared to that of the control (P<0.05). The germination rate and germination indexes of the control were 100.00% and 30.00% respectively. During the storage period, CEO treatment affected potato respiratory intensity and slowed down the decrease of starch, reduced sugar, total sugar, and soluble protein content. Meanwhile, CEO treatment inhibited the accumulation of reducing sugar and accelerated the degradation rate of sucrose, however, little change in total protein, fructose, and glucose was observed. These results indicated that citronella essential oil had a good inhibitory effect on the germination of potato tubers, and citronella essential oil had a greater effect on sugar metabolism, but less effect on protein metabolism. The specific physiological, biochemical, and molecular mechanisms need further study.

Key words potato tubers; citronella essential oil; sprout inhibition effect; sugar metabolism

DOI:10.13995/j.cnki.11-1802/ts.029295

引用格式:袁丽雪,赵愉涵,孙斐,等.香茅精油处理对马铃薯的抑芽作用研究[J].食品与发酵工业,2022,48(23):256-263.YUAN Lixue, ZHAO Yuhan, SUN Fei, et al.Inhibition effect of citronella essential oil on potato tuber sprout[J].Food and Fermentation Industries,2022,48(23):256-263.

第一作者:硕士研究生(陈庆敏教授和傅茂润教授为共同通信作者,E-mail:coconut508@163.com;skyfmr@163.com)

基金项目:山东省自然科学基金重点项目(ZR2020KC014);山东省高等学校“青创科技计划”团队项目(2019KJF010);齐鲁工业大学(山东省科学院)青年博士合作基金项目(2019BSHZ0024)

收稿日期:2021-09-06,改回日期:2021-10-19