猕猴桃,又名奇异果、阳桃,富含维生素C、维生素A、氨基酸、可溶性膳食纤维、矿物质等营养成分,具有抗氧化、抗衰老、预防心血管疾病等多种功能,素有“水果之王”美称[1]。猕猴桃果酒作为猕猴桃精深加工产品之一,具有独特的风格和保健功能,市场前景广阔。但由于受发酵菌种、工艺技术等的影响,猕猴桃酒存在风味淡薄、果香酯香不突出等问题[2]。

近年来,非酿酒酵母与酿酒酵母混合发酵果酒受到研究者的关注。非酿酒酵母在发酵过程产生多种胞外酶,与香气前体物质相互作用产生酯类、酸类、醇类、萜类化合物等代谢产物,对果酒增香、丰富口感具有举足轻重的作用[3]。葡萄园有孢汉逊酵母(Hanseniaspora vineae)是一种用于酿酒的非酿酒酵母,因能产生2-苯乙酸乙酯、2-苯乙醇、乙酸乙酯等关键的芳香化合物,与酿酒酵母共培养增加果酒复杂性,能显著影响果酒感官特性开始受到研究者关注[4-6]。葡萄园有孢汉逊酵母与酿酒酵母连续接种发酵可以提高霞多丽葡萄酒香气强度和酒体复杂性,香蕉、梨、柠檬果香显著提高,葡萄酒酒体丰满、香味浓郁、回味绵长、口感更佳[7]。在白葡萄酒及红葡萄酒酿造中应用葡萄园有孢汉逊酵母,发现其与酿酒酵母顺序接种对苯类化合物苯丙烷类、乙酸酯类的生成优于酿酒酵母发酵,且无论顺序接种还是同时接种感官评价均高于酿酒酵母酿造果酒[8]。亦有研究发现葡萄园有孢汉逊酵母与酿酒酵母混合顺序接种发酵维达布兰科冰酒,能够产生更多与果香、花香、甜香有关的挥发物,如乙酸酯、顺式玫瑰氧化物等,感官香气得到显著提升[9]。

目前,关于猕猴桃果酒研究多集中在酵母筛选[10]、香气分析[11]、单一菌种发酵工艺优化、抗氧化活性等方面[12],混菌发酵猕猴桃果酒也开始受到关注。使用不同酿酒酵母与非酿酒酵母共发酵猕猴桃果酒,发现不同酿酒酵母与非酿酒酵母酿造果酒品质不一,酵母菌共培养技术对获得高品质猕猴桃酒具有一定的裨益[13]。尹雪林等[14]使用戴尔有孢圆酵母与酿酒酵母混菌发酵猕猴桃果酒,发现混酵中挥发性香气成分种类多于单菌发酵,特别是顺序接种发酵提高了酒中苯乙酸乙酯、苯乙醇、β-大马士酮等物质含量。

非酿酒酵母在果酒酿造中发挥越来越重要的作用,非酿酒酵母种类较多,使用葡萄园有孢汉逊酵母与酿酒酵母混合培养猕猴桃果酒的工艺优化、体外抗氧化能力的探究鲜有报道。安琪果酒酵母在果酒酿造中广泛使用,具有较强的耐酒精能力且酿造果酒品质较好。因此本试验将葡萄园有孢汉逊酵母与安琪果酒酵母混合接种于猕猴桃汁中进行发酵,设计单因素与正交试验确定混菌发酵猕猴桃酒最适发酵工艺,同时对混菌发酵果酒、安琪果酒酵母发酵果酒、非酿酒酵母发酵果酒、果汁的抗氧化活性进行探究,以期为非酿酒酵母应用于猕猴桃果酒提供理论依据。

1 材料与方法

1.1 材料

猕猴桃采于河南内乡,品种“徐香”；果胶酶、偏重亚硫酸钾,食品级,烟台帝伯仕自酿机有限公司；白砂糖,市售。酿酒酵母(SY),安琪酵母股份有限公司；葡萄园有孢汉逊酵母(Hanseniaspora vineae,CGMCC 2.3268),中国普通微生物菌种保藏管理中心。

1.2 仪器与设备

CD14RDII台式高速冷冻离心机,上海天美生化仪器设备有限公司；TU—1901紫外可见分光光度计,北京普析通用仪器有限责任公司；MJ-54A高压灭菌锅,施都凯仪器设备(上海)有限公司；PAL-1数显糖度计,日本爱拓公司；多功能酶标仪,PerkinElmer公司。

1.3 试验方法

1.3.1 猕猴桃酒工艺流程

猕猴桃→挑选→清洗→去皮榨汁→添加偏重亚硫酸钾、果胶酶→酶解→4层纱布过滤→调整糖度→灭菌→接种酵母→前发酵→过滤澄清→后发酵→灭菌→密封装瓶

1.3.2 猕猴桃酒工艺优化单因素试验

1.3.2.1 接种方式对猕猴桃酒的影响

在SO2质量浓度60 mg/L、初始糖度20 °Brix、接种量2%、接种比1∶1(体积比)的条件下,将酿酒酵母提前48 h接入、酿酒酵母提前24 h接入、非酿酒酵母与酿酒酵母同时接入、非酿酒酵母提前24 h接入、非酿酒酵母提前48 h接入猕猴桃果汁,25 ℃恒温发酵7 d。

1.3.2.2 接种量对猕猴桃酒的影响

在SO2质量浓度60 mg/L、初始糖度20 °Brix、接种体积比为1∶1、非酿酒酵母提前24 h 接入的条件下,调整不同酵母接种量(2%、3%、4%、5%、6%)接入猕猴桃果汁,25 ℃恒温发酵7 d。

1.3.2.3 接种比例对猕猴桃酒的影响

在SO2质量浓度60 mg/L、初始糖度20 °Brix、接种量4%、非酿酒酵母提前24 h 接入的条件下,调整酿酒酵母∶非酿酒酵母接种比例分别为1∶1、1∶2、2∶1、1∶3、3∶1(体积比)接入猕猴桃果汁,25 ℃恒温发酵7 d。

1.3.2.4 初始糖度对猕猴桃酒的影响

在SO2质量浓度60 mg/L、接种量4%、非酿酒酵母提前24 h 接入、接种比例1∶1(体积比)的条件下,调整猕猴桃果汁糖度分别为18、20、22、24、26 °Brix,25 ℃恒温发酵7 d。

1.3.2.5 发酵温度对猕猴桃酒的影响

在SO2质量浓度60 mg/L、接种量4%、非酿酒酵母提前24 h接入、接种比例1∶1(体积比)、初始糖度26°Brix的条件下,调整发酵温度分别为 19、21、23、25、27 ℃发酵7 d。

1.3.2.6 发酵时间对猕猴桃酒的影响

在SO2质量浓度60 mg/L、接种量4%、非酿酒酵母提前24 h接入、接种比例1∶1(体积比)、初始糖度26 °Brix的条件下,调整发酵时间分别为7、9、11、13、15 d,25 ℃恒温发酵。

1.3.3 猕猴桃酒工艺优化正交试验

在单因素试验的基础上,挑选对猕猴桃酒影响较大的因素设计正交试验方案,进行综合研究分析,并确定最佳工艺条件组合。正交试验因素与水平见表1。

1.3.4 混菌发酵猕猴桃果酒抗氧化活性分析

以0.2% 维生素C溶液为阳性对照,测定混菌发酵工艺优化后的果酒、SY酿酒酵母发酵果酒、H.vineae非酿酒酵母发酵果酒、果汁的·OH、DPPH自由基、ABTS阳离子自由基清除能力和铁离子还原能力,探究抗氧化活性。

1.3.4.1 ·OH清除能力测定

采用羟自由基反应试剂盒测定。

1.3.4.2 DPPH自由基清除能力测定

参考吴均等[15]的测定方法,略作改动。以无水乙醇与0.2 mmol/L DPPH溶液各2 mL混合后的吸光度值为A0,然后取样品各0.02、0.04、0.06、0.08、0.10、0.12、0.16 mL于试管中,用纯水稀释至2 mL,加入0.2 mmol/L DPPH溶液2 mL,混匀避光30 min,于517 nm处测定吸光度值Ai；同时测定0.02、0.04、0.06、0.08、0.10、0.12、0.16 mL样品与无水乙醇各2 mL混合后的吸光度值Aj。DPPH自由基清除率计算公式如(1)所示：

DPPH自由基清除率

(1)

1.3.4.3 ABTS阳离子自由基清除能力测定

参考秦晋颖等[16]的测定方法,略作改动。分别取0.02、0.04、0.06、0.08、0.10、0.12、0.16 mL的果酒于试管中,用纯水补充至2 mL,加入ABTS阳离子自由基工作液2 mL,摇匀,避光静置30 min,于734 nm处测定吸光度值Ai；以纯水替代样品为空白对照,测得吸光度值为A0。ABTS阳离子自由基清除率计算公式如公式(2)所示：

ABTS阳离子自由基清除率

(2)

1.3.4.4 铁离子还原能力测定

参考BENZI等[17]的测定方法,略作改动。制备铁离子还原能力(ferric reducing ability of plasma,FRAP)工作液,于37 ℃恒温水浴锅中贮藏备用。分别取0.01、0.02、0.03、0.04、0.05、0.06、0.08 mL果酒于试管中,用纯水补充至2 mL,取稀释好的果酒6 μL,加入预热至37 ℃的FRAP工作液180 μL、超纯水18 μL,避光精确反应5 min,酶标仪测定593 nm吸光度,双蒸水为空白对照。以0.2～1.6 mmol/L处FeSO4溶液做标准曲线：y=0.370 4x+0.139 6(R2=0.999 3),根据标曲计算硫酸亚铁的浓度(mmol/L)。

1.4 检测方法

1.4.1 理化指标的测定

总酸、维生素C含量测定均参照GB/T 15038—2006《葡萄酒、果酒通用分析方法》；总酚采用Folin-Ciocalte 比色方法测定[12]；酒精度采用重铬酸钾氧化法测定[14]；还原糖含量采用3,5-二硝酸水杨酸法测定[18]；可溶性固形物含量采用手持糖度计测定。

1.4.2 感官评定

分别选择男女专家共8人组成品评组,感官评分参考葡萄酒与果酒评分标准。评分细则见表2。

1.5 数据分析

使用Excel 2010整合试验数据,每组试验重复3次；使用SPSS 25.0软件进行统计分析,利用方差分析(analysis of variance,ANOVA)与Duncan检验进行差异显著性检验,P<0.05表示差异显著；使用Origin 2021软件作图。

2 结果与分析

2.1 混菌发酵猕猴桃果酒工艺优化

2.1.1 不同接种方式对猕猴桃酒发酵效果的影响

由表3可知,酿酒酵母提前48 h接入,果酒酒精度较高,与其他接种方式具有显著差异,此时酿酒酵母有足够的生长空间与营养,代谢活跃[19],但果酒口感寡淡,果香花香单薄；随着H.vineae接入时间的提前,酒精度呈现降低趋势,非酿酒酵母消耗营养物质,影响酒精生成[20]；接种顺序对总酸、可溶性固形物影

响不大,对残糖有一定的影响；酿酒酵母的提前接入对果酒营养成分损害较为严重,而H.vineae 提前接入可以较好保存维生素C、多酚,将H.vineae提前24 h 接入,所得果酒口感醇厚,稍有回味,花果香明显,感官评分较高。

2.1.2 不同接种量对猕猴桃酒发酵效果的影响

果酒发酵过程中,酵母接种量影响酵母的发酵速率、呼吸产能。如表4所示,随着接种量的逐步增大,酒精度先增大后趋于平缓,总酸在接种量4%时最小；接种量对还原糖影响不显著,可溶性固形物稍有变化；总酚随着接种量增大而减小,可能是随着接种量增大,酵母代谢产物增多,有氧化酶作用于多酚[21]；接种量4%时,维生素C含量最高,所酿果酒酒香舒适,酸味清爽,口感醇厚。

2.1.3 不同初始糖度对猕猴桃酒发酵效果的影响

由表5可知,随着初始糖度的增大,酒精度、还原糖、可溶性固形物呈现出增大的趋势,符合猕猴桃果酒发酵特点[21-22]；总酸与维生素C含量呈现先减小后增大的趋势,多酚则呈现出先增大后减小的趋势,初始糖度在26 °Brix时,果酒草木香明显、花香果香浓郁,入口醇厚,回味悠长,这可能是糖类物质为非酿酒酵母提供了充足的底物,生成的代谢产物酶类有助于香气的生成。由于过高的糖度会造成资源浪费,综合考虑,选用24、25、26 °Brix做正交优化试验。

2.1.4 不同接种比例对猕猴桃酒发酵效果的影响

酿酒酵母与非酿酒酵母的接种比例是影响果酒风味品质的重要因素[23]。如表6 所示,不同接种比例(SY∶H.vineae)发酵果酒酒精度无显著差异；接种比例1∶1时总酸最小；还原糖与可溶性固形物随着H.vineae接入比例的增大而增大,随SY接入比例的增大而减小,呈现出显著差异；多酚含量变化较为平缓,在接种比例1∶3时最高；维生素C含量在H.vineae比例上升时呈现出增大趋势。

尽管H.vineae比例较大时有利于营养成分保存,但非酿酒酵母占比过高导致果酒酒香变弱,并有杂味溢出。在接种比例1∶1时,果酒感官评分最高,酸度适中,这与总酸含量一致,酒香中掺杂独特果香,舒适度较高。

2.1.5 不同发酵温度对猕猴桃酒发酵效果的影响

微生物拥有自身适合的生存温度,温度影响其生长和代谢产物的合成,从而影响果酒的感官品质。从表7可以看出,随发酵温度升高,酒精度逐渐降低,还原糖与可溶性固形物逐渐减小,且差异显著,按照发酵规律,酒精度降低可溶性固形物应该升高,与本研究呈现出的结果不符,可能因为酿酒酵母与非酿酒酵母相互作用导致的结果,这有待进一步探究；发酵温度对总酸、多酚含量的影响不大；维生素C含量随着温度升高而降低。25 ℃发酵果酒酒体丰厚,果香浓郁,感官舒适,本研究选用25 ℃作为最适发酵温度。

2.1.6 不同发酵时间对猕猴桃酒发酵效果的影响

如表8所示,随着发酵时间的延长酒精度先升高后降低,第9天为峰值,总酸则呈现出逐渐增大的趋势,这可能与葡萄园有孢汉逊酵母高产乙酸的特性有关[24]；发酵时间越长,还原糖增加,可溶性固形物越低；总酚含量先升高后降低；发酵时间越长维生素C损失越严重；第9天时发酵所得果酒酒香浓郁,具有优雅的花香,口感醇厚,回味悠长,感官评分80.67分,综合考虑,将9 d选为最适发酵时间。

2.2 混菌发酵猕猴桃果酒工艺优化正交试验与结果分析

正交试验选用维生素C含量、感官评分及酒精度作为综合评价指标。如表9所示,当以维生素C含量做评价指标时,各因素对猕猴桃果酒维生素C含量的影响次序为接种顺序>初始糖度>接种量>接种比例,表明接种顺序对维生素C含量影响最大,最优发酵工艺参数为A3B1C3D1；当以感官评分做评价指标时,各因素影响次序为接种量>接种比例>接种时间>初始糖度,最优发酵工艺为A3B2C3D2；当以酒精度为评价指标时,各因素的影响次序为初始糖度>接种量>接种顺序>接种比例,最优发酵工艺为A3B1C2D1或A3B1C2D2。综合评价,接种量对果酒影响较大,因此选择A3B2C3D2与A3B1C3D1分别做验证试验。A3B2C3D2,即H.vineae提前36 h接种,接种量4%,接种比例1∶1.5,初始糖度25 °Brix,25 ℃发酵9 d,此条件下发酵猕猴桃果酒酒精度13.83%、维生素C含量726.15 mg/L、感官分值83.34；A3B1C3D1,即H.vineae提前36 h接种,接种量3.5%,接种比例1∶1.5,初始糖度24 °Brix,25 ℃发酵9 d,此条件下发酵猕猴桃果酒酒精度12.71%、维生素C质量浓度668.94 mg/L、感官分值81.67。综上,选择A3B2C3D2为最适发酵工艺,在此条件下发酵果酒酒液澄清透亮,无悬浮沉淀,酒香浓郁,花香果香舒适,酒体丰厚但口感稍酸,回味悠长。

2.3 混菌发酵果酒与单菌发酵果酒抗氧化能力比较分析

2.3.1 SY单菌、H.vineae单菌、混菌发酵果酒及果汁中总酚含量比较

如图1所示,SY单菌、H.vineae单菌、混菌发酵果酒与果汁的总酚质量浓度分别为752.35、804.44、823.18、1 025.56 mg/L,安琪果酒酵母发酵的猕猴桃果酒多酚含量最低,与混菌发酵果酒和果汁比较具有显著差异,而果酒酿造对多酚损失具有一定的作用,多酚含量显著降低,这可能与酿造温度和微生物代谢有关,本试验选用发酵温度25 ℃和4%接种量,高温和过高的接种量可能不利于多酚的保存。

2.3.2 ·OH清除能力比较

如图2所示,混菌发酵、SY单菌、H.vineae单菌发酵果酒、果汁及维生素C溶液的·OH清除率随着样品用量增大呈现出增大的趋势。当样品量在0.02～0.06 mL时,果汁、混菌、SY单菌的·OH清除率快速上升,而后缓慢增长,在样品用量0.06 mL时,清除率分别为91.16%、92.32%和91.51%,此时自由基清除效果较好。H.vineae单菌发酵果酒整体清除能力较弱,维生素C溶液对·OH清能力均优于4种样品,·OH清除率大小依次为混菌、SY单菌、果汁、H.vineae单菌。

2.3.3 DPPH自由基清除能力比较

由图3可知,DPPH自由基清除效果随着4种样品及维生素C溶液用量的增大呈现出增强的趋势。用量0.04 mL时,混菌发酵果酒、H.vineae单菌发酵果酒、果汁和维生素C的自由基清除水平已较高,清除率分别为93.58%、94.71%、94.73%和94.66%,随着体积继续增大,DPPH自由基的清除率缓慢上升。而SY单菌发酵果酒到0.04 mL时才达到79.72%,再增大用量才能具有较高的DPPH自由基的清除能力。维生素C溶液DPPH自由基的清除能力优于4种样品。综合整体趋势,4种样品对DPPH自由基清除效果最好的是混菌发酵果酒,而后是果汁、H.vineae单菌,SY单菌发酵果酒最次,这与多酚呈现出了相同的趋势,在王冬伟等[12]的研究中表明,自由基清除率与酚类物质具有一定的关联。

2.3.4 ABTS阳离子自由基清除能力比较

由图4可知,随样品用量的增加,4种样品及维生素C的ABTS阳离子自由基清除率随之增大。在用量为0.04 mL时,果汁和维生素C溶液对应的自由基清除率分别为94.50%、93.87%,达到较高的自由基清除效果,此时混菌发酵、SY单菌、H.vineae单菌发酵果酒分别为87.15%、83.02%、69.72%,而后随着样品量增大清除能力均达到90%以上。混菌发酵果酒整体ABTS阳离子自由基清除能力优于单菌发酵果酒。

2.3.5 铁离子还原能力比较

如图5所示,4种样品及维生素C的铁离子还原能力随样品用量的增加而增大。在4种样品及维生素C用量为0.01 mL时,混菌、SY单菌、H.vineae单菌、果汁及维生素C的铁离子还原能力为27.97、28.54、40.19、38.03及48.91 mmol Fe2+/L,而后随着样品用量的增大均快速增大,在样品用量0.08 mL时分别达到123.65、104.04、120.47、126.10、116.87 mmol Fe2+/L。综合整体趋势,果汁的铁离子还原能力优于果酒,H.vineae单菌发酵果酒铁离子还原能力较强,混菌发酵果酒优于SY单菌发酵果酒。

3 结论

本研究运用单因素试验与正交设计分析得出了葡萄园有孢汉逊酵母与安琪果酒酵母混合发酵猕猴桃果酒的最优工艺参数：H.vineae提前36 h接种；接种量4%；酿酒酵母与非酿酒酵母接种比例1∶1.5(体积比)；初始糖度25°Brix；发酵温度25 ℃；发酵时间9 d,此条件下得到的酒香浓郁、伴随花果香、入口稍酸但口感醇厚、回味悠长的猕猴挑果酒,感官评分83.34分,酒精含量13.84%。同时对果汁、混菌、SY 单菌、H.vineae单菌发酵果酒的体外抗氧化能力通过4个抗氧化体系(·OH、DPPH自由基、ABTS阳离子自由基、FRAP)进行了探究,结果表明自由基清除能力与铁离子还原能力均随样品用量增大而增大,混菌发酵果酒抗氧化活性优于单菌发酵果酒。总体而言,混菌发酵果酒不仅可以改善果酒品质,而且抗氧化能力较单菌发酵果酒更优,整体功能性有所提升。该研究为非酿酒酵母应用于猕猴桃果酒、提升猕猴桃果酒品质提供参考,葡萄园有孢汉逊酵母与安琪果酒酵母混合发酵对猕猴桃果酒风味物质的影响尚待进一步探究。

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Optimization of fermentation conditions for mixed bacteria of kiwifruit wine and its antioxidant activity

JIN Haiyan1,WANG Fengyuan1,LU Yunfeng1*,ZHANG Sipu2,NIU Jiajia2, TANG Cunduo1,ZUO Weifang1,YANG Yongfeng3

1(Nanyang Normal University,Nanyang 473061,China) 2(Institute of Horticulture,Henan Academy of Agricultural Sciences,Zhengzhou 450008,China) 3(Henan FuNiushan Biological Technology Co.Ltd.,Neixiang 474350,China)

ABSTRACT In order to improve the flavor and taste of kiwi wine brewed by Saccharomyces cerevisiae, the effects of co-fermentation of Hanseniaspora vineae and Saccharomyces cerevisiae on kiwi fruit wine were studied. Based on single factor test, orthogonal optimization test was carried out to determine the optimal fermentation process of kiwi fruit wine fermented by the mixed bacteria. Meanwhile, the scavenging capacity of OH、DPPH、ABTS+ free radical scavenging ability and Fe3+ reducing capacity free radic were measured for the evaluation of the antioxidant activity of kiwi fruit wine. The optimum fermentation process was determined as follows: H. vineae inoculation for 36 h in advance; inoculation amount was 4%; inoculation ratio of Saccharomyces cerevisiae to non-Saccharomyces cerevisiae was 1∶1.5 (V∶V); initial sugar content 25 °Brix. After fermentation at 25 ℃ for 9 days, kiwi fruit wine with strong aroma, elegant flower and fruit aroma and mellow taste was obtained, and the alcohol degree was 13.83% vol. The results of antioxidant study showed that the free radical scavenging rate and iron ion reduction capacity increased with the increase of sample volume, and the antioxidant capacity of kiwifruit wine fermented by mixed bacteria was better than that of single bacteria fermentation. This study provides a reference for the application of non-Saccharomyces cerevisiae in kiwi fruit wine.

Key words Hanseniaspora vineae; mixed fermentation; kiwi wine; antioxidant activity

DOI:10.13995/j.cnki.11-1802/ts.028328

引用格式:金海炎,王丰园,鲁云风,等.混菌发酵猕猴桃果酒工艺条件优化及抗氧化性研究[J].食品与发酵工业,2022,48(3):177-185.JIN Haiyan,WANG Fengyuan,LU Yunfeng,et al.Optimization of fermentation conditions for mixed bacteria of kiwifruit wine and its antioxidant activity[J].Food and Fermentation Industries,2022,48(3):177-185.

第一作者：硕士研究生(鲁云风副教授为通信作者，E-mail: yunflu@163.com)

基金项目：河南省大宗水果产业技术体系项目(S2014-11-G04)；南阳师范学院研究生创新基金项目(2020CX005)

收稿日期：2021-06-20,改回日期：2021-07-25