热杀菌对朝鲜族传统米酒关键香气物质的影响及品质恢复途径研究

王美淇,熊思瑞,金铁岩*

(延边大学 农学院,吉林 延吉,133002)

摘 要 该研究以65 ℃/5 min热杀菌条件为研究对象,系统评估其对朝鲜族传统米酒关键香气物质的影响,并探讨外源亮氨酸添加在香气恢复中的作用机制。通过定量描述性感官分析,气相色谱-嗅闻联用(gas chromatography-olfactometry,GC-O)、香气活性值(odor activity value,OAV)计算以及香气重组/缺失实验,解析了关键香气组分;结合GC-MS与正交偏最小二乘判别分析(orthogonal partial least squares-discriminant analysis,OPLS-DA)筛选差异标志物,并监测氨基酸与有机酸变化。结果表明,热杀菌导致果香属性显著下降(P<0.01),己酸乙酯和丁酸异戊酯被确认为风味劣变的核心驱动因子,亮氨酸在处理过程中显著降解,其与酯类损失呈正相关,代谢通路推演显示其可通过异戊醇途径参与高级酯合成。外源添加200 mg/L亮氨酸显著恢复了关键酯类含量,并使果香属性评分提升47.6%(P<0.001)。多维结果[GC-O、OAV、重组试验、气相色谱-离子迁移谱(gas chromatography-ion mobility spectrometry,GC-IMS)、GC-MS、OPLS-DA]高度一致,构建了“氨基酸降解-酯类减少-香气下降”的完整验证流程,该研究揭示了热杀菌诱导米酒香气劣变的分子机制,并提出基于前体补偿的品质恢复策略,为传统发酵酒的产业化与温和杀菌工艺优化提供理论依据和技术路径。

关键词 朝鲜族传统米酒;热杀菌;香气活性值;风味劣变;亮氨酸;品质恢复

朝鲜族传统米酒以其独特的香气和风味在民族饮食文化中占据重要地位[1]。然而,热杀菌作为保障产品安全和延长货架期的必要工艺,往往会导致挥发性风味物质的显著损失,从而严重影响米酒的感官品质和产业化推广。已有研究表明[2-3],热处理可加速酯类水解与醇类氧化,导致果香、花香等关键属性下降,但其作用机制及前体物质的代谢路径尚缺乏系统解析。

酯类化合物是决定食品风味特征的主要贡献者,其中己酸乙酯和丁酸异戊酯常被鉴定为风味核心物质[4]。然而,这类化合物在热处理过程中高度敏感,极易发生断裂或转化。同时,氨基酸作为发酵产物中的重要风味前体,其在热杀菌条件下的变化对酯类合成具有潜在影响。亮氨酸作为支链氨基酸之一[5],不仅能通过α-酮酸途径转化为异戊醇,再进一步生成丁酸异戊酯,还可能通过调控氨基酸—脂肪酸代谢的交叉作用,间接影响其他酯类物质的合成。因此,探究亮氨酸在米酒香气形成和恢复中的作用机制,对理解热杀菌引起的风味劣变具有重要意义。

目前,关于米酒热杀菌后香气变化的研究多集中在单一分析手段,如GC-MS定量分析或感官评价,缺乏多维数据的交叉验证和机制推演。同时,对于外源前体添加是否能有效恢复热杀菌导致的香气损失,仍缺少系统性的实证研究。基于此,本研究以65 ℃/5 min温和杀菌为对象(该参数为课题组前期筛选确定的,在能达到杀菌目的的前提下对风味保留最为有利的‘最优温和参数’),创新性地构建了从感官评价、气相色谱嗅闻(gas chromatography-olfactometry,GC-O)结合香气活性值(odor activity value,OAV)分析到多组学气相色谱-离子迁移谱(gas chromatography-ion mobility spectrometry,GC-IMS)、GC-MS和正交偏最小二乘判别分析(orthogonal partial least squares-discriminant analysis,OPLS-DA)的多维度风味解析体系,并结合亮氨酸外源补偿实验,揭示热杀菌诱导香气劣变的关键机制,提出基于氨基酸前体补偿的品质恢复策略。与以往研究相比,本研究不仅明确了亮氨酸在酯类合成中的前体作用,还提出了其作为代谢调控因子的潜在角色,实现了跨平台、多组学验证和机制推演,旨在为朝鲜族传统米酒的产业化生产及温和杀菌工艺优化提供理论依据与技术路径。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

米酒,实验室自制,确保原料与工艺一致性;蜂蜜、大米,延吉百货大楼超市;安琪酵母(食品级),安琪酵母股份有限公司;2-辛醇、正构烷烃混合标品(C7~C40)、乙酸标准品,美国Sigma公司;氯化钠(分析纯),上海麦克林生化科技有限公司;正庚醇、2-甲基丁酸乙酯、乙酸异戊酯、丁酸异戊酯、辛酸乙酯、2-戊基呋喃标准品,上海源叶生物科技有限公司;乙酸乙酯、丁酸乙酯、异戊醇标准品,北京坛墨质检科技有限公司;乙酸叶醇酯、正己醇、1-壬醇、苯乙醇、乙醇标准品,阿拉丁生化科技股份有限公司;己酸乙酯标准品,梯希爱(上海)化成工业发展有限公司。

1.2 仪器与设备

ODP嗅闻装置,广州智达实验室科技有限公司;THZ-92B气浴恒温振荡器,上海博讯医疗生物仪器股份有限公司;DK-8D数显恒温水浴锅,无锡沃信仪器制造有限公司;BSA224S电子天平,北京赛多利斯科学仪器有限公司;7890B-5977B GC-MS、DB-wax毛细管柱(30 m×0.25 mm×0.25 μm),美国安捷伦公司;50/30 μm DVB/CAR on PDMS顶空固相微萃取装置萃取头,西格玛奥德里奇公司。

1.3 实验方法

1.3.1 米酒酿造流程与热杀菌处理

米酒酿造流程如图1所示:

图1 朝鲜族米酒工艺流程

Fig.1 Korean rice wine process flow

以上步骤均在无菌条件下进行,避免杂菌污染影响米酒品质。本研究以同一批次酿造的朝鲜族传统米酒为原料,确保样本初始风味一致性。将米酒均匀分装后,设置以下4个处理组:未杀菌米酒(unpasteurized control,UB)组:压榨后不做任何杀菌处理,直接得到的样品酒;65 ℃杀菌5 min米酒(低温短时杀菌,low-temperature short-time sterilized,LTST)组:将压榨后的朝鲜族米酒,在65 ℃条件下保持5 min然后迅速冷却至4~5 ℃;85℃杀菌30 min米酒(巴氏杀菌,Pasteurized,PAS)组:将压榨后的朝鲜族米酒,控制温度85 ℃,持续保温30 min后急速冷却到4~5 ℃;125 ℃灭菌5 s米酒(超高温瞬时灭菌,ultra-high temperature instantaneous sterilized,UHT)组:将过滤后的米酒通过离心泵注入高温瞬时灭菌机的冷热物料交换装置,完成预热,于高温桶中将米酒迅速加热至125 ℃,并保持5 s。所有样品均设置3次生物学重复,处理后迅速冷却至室温并于4 ℃保存。

1.3.2 朝鲜族传统米酒关键香气鉴定及感官效应解析

1.3.2.1 定量描述性感官评价

参照文献[6],本研究采用定量描述性分析建立米酒感官评价体系。由10名经训练的评价员(男女各5名,25~30岁),针对谷物香、果香、甜香、花香、醇香和异味6个属性进行9分量表评分(1=极弱,9=极强),各属性定义及参照物如表1所示,结果以平均值表示。

表1 米酒感官描述词及定义

Table 1 Rice wine sensory descriptors and definitions

感官描述词定义参比样谷物香与熟制谷物(玉米、小麦)的香气有关膨化大米果香让人联想到甜美的水果香气乙酸乙酯甜香让人联想到类似蜂蜜奶油的甜香气蜂蜜花香与非特定品种的花有关的香气苯乙醇醇香乙醇水溶液的气味乙醇异味乙酸水溶液的气味乙酸

1.3.2.2 活性香气化合物GC-MS与GC-O分析

香气富集采用顶空固相微萃取法提取[7]。具体步骤为:将待测酒样稀释5倍,移取6 mL稀释液于顶空瓶中,添加1.0 g NaCl以增强挥发性组分吸附效率,于45 ℃平衡5 min,随后顶空萃取30 min。萃取纤维在250 ℃解吸5 min后进样。GC程序升温:40 ℃保持5 min,以5 ℃/min升至220 ℃保持2.5 min,再以5 ℃/min升至250 ℃保持2.5 min。

GC-O采用3位评价员嗅辨,0~5分制评估香气强度。对于同一种物质,至少有2名评价员的评价结果一致才确定为该物质的香气特征和强度[8-10]

1.3.2.3 活性香气化合物的OAV计算

按公式(1)计算OAV。OAV>1表明该物质对总体香气有重要贡献,其贡献程度与OAV呈正相关。需要注意的是,本研究采用水中的气味阈值进行计算,而米酒基质中含有乙醇、糖类、有机酸等成分,可能显著改变化合物的实际感知阈值,从而影响OAV的准确性。未来研究可优先引用在类似酒类基质中测定的阈值,以更准确地评估各香气化合物在复杂基质中的贡献度。

(1)

式中:OAVi:第i种香气化合物的香气活性值;Ci,第i种目标香气化合物的实际浓度,μg/kg;OTi,通过文献查得第i种化合物在水中的气味阈值,μg/kg。

1.3.2.4 香气重组与单体缺失试验

将OAV>1的物质按实际浓度添加至模拟基质(体积分数30%乙醇水溶液),构建重组模型。通过盲评比较重组模型与真实样品的相似度,并通过单体缺失实验评估特定化合物的重要性。

1.3.3 热杀菌米酒中挥发性物质分析及呈味物质形成途径探究

1.3.3.1 GC-IMS测定

取1 mL样品稀释,60 ℃孵育10 min,注入GC-IMS分析。相关参数设定如下:色谱分离采用MXT-WAX色谱柱(30 m×0.53 mm,1.0 μm);柱温为60 ℃;分析时间为30 min。高纯氮气(99.99%)作为载气与漂移气,流速程序设置为:初始流速2.0 mL/min,保持2 min后,在3 min内线性增至10 mL/min,随后在20 min内线性增至100 mL/min。进样体积为100 μL,进样针温度65 ℃,IMS温度60 ℃,样品在顶空瓶中以500 r/min 转速孵化。

1.3.3.2 热杀菌处理后朝鲜族传统米酒挥发性化合物分析与OAV计算

采用1.3.2.2节与1.3.2.3节所述方法,分别对热杀菌处理后的米酒样品进行挥发性化合物的GC-MS、GC-O分析及其OAV的计算。

1.3.3.3 不同杀菌方式的朝鲜族传统米酒理化指标的测定

参考相应国家标准及文献方法测定米酒样品的理化指标。pH值采用酸度计直接测定;总酸参照GB/T 15038—2006《葡萄酒、果酒通用分析方法(含第1号修改单)》中电位滴定法进行测定;酒精度与糖度均参考GB/T 13662—2018《黄酒》进行测定。其中酒精度经温度校正后以体积分数表示,糖度采用二硝基水杨酸法测定;氨基酸组成测定参考WENG等[11]报道的方法,使用氨基酸全自动分析仪进行分析。有机酸含量参考文献[12]进行测定,经固相萃取前处理后,采用HPLC分析[13]。色谱条件如下:采用离子排斥色谱柱(300 mm×7.8 mm),柱温25 ℃;以8 mmol/L硫酸水溶液为流动相,流速0.6 mL/min;进样量20 μL;采用紫外检测器于210 nm波长下进行检测。

1.3.3.4 前体物质添加实验

为探究亮氨酸对朝鲜族传统米酒风味的影响,本研究开展呈味物质前体添加实验。将亮氨酸以0、50、200、400 mg/L的质量浓度梯度,分别添加至等量未杀菌米酒样品中,随后对样品进行65 ℃、5 min的杀菌处理。采用GC-MS定量挥发性化合物,并通过定量描述性分析评估果香属性变化。

1.4 数据处理

所有实验重复3次,结果以“平均值±标准差”表示。采用SPSS 26.0进行方差分析,P<0.05判定为显著差异。化学计量学分析与作图使用Origin 2021、Unscrambler X 10.4和Simca 14.0完成。

2 结果与分析

2.1 不同热杀菌前后米酒香气属性分析

感官属性分析结果如图2所示,热杀菌处理显著改变了米酒的香气轮廓。

图2 不同热处理米酒样品香气轮廓比较

Fig.2 Comparison of aroma profiles of rice wine samples with different heat treatment

注:*表示与UB组相比差异显著(P<0.05);**表示与UB组相比差异极显著(P<0.01)。

其中,果香属性受热处理影响极显著(P<0.01)。随着杀菌温度升高,除异味外,各香气属性评分均呈现整体性下降趋势,推测是因热处理导致醇、酯类风味物质水解,转化为酸类等异味化合物所致。UB组在绝大多数香气属性上均显著优于热处理组,展现了最完整、协调的风味轮廓。

2.2 基于GC-O与OAV的关键香气物质筛选

2.2.1 分析不同热杀菌条件下米酒的活性香气物质香气强度

鉴于GC-MS鉴定的挥发性物质并非均对香气有贡献[14],本研究联合采用GC-O香气强度分析与OAV计算,以全面鉴定朝鲜族米酒中的关键呈香组分。

感官小组通过芳香提取物稀释分析法在4个样品中共鉴定31种活性香气物质(醇类9种、酯类16种、烃类3种、醛类2种、呋喃类1种)。UB、LT、PAS及UHT组分别检出28、28、26、21种活性物质,其中19种为共有组分。

图3结果显示,2,4-二叔丁基苯酚、异丁醇与苯乙烯在所有热杀菌处理组及未杀菌处理组中均有检出;2-甲基丁醇(谷物香)仅存在于UB组;β-环柠檬醛为LT组特有,其产生可能与温和热处理(65 ℃)促进米酒中残留的类胡萝卜素等前体物质发生氧化降解有关[15];α-松油醇与R-γ-癸内酯仅见于UHT组,这通常与内酯化反应关联,或源于特定脂肪酸在高温下的转化[16]。值得注意的是,16种酯类中辛酸乙酯、壬酸乙酯及癸酸乙酯等中链脂肪酸乙酯可协同增强果香-花香感知并提升酒体延续性与饱满度[17-18]。LTST组中乙酸乙酯、丁酸异戊酯等关键酯类的香气强度分布趋近UB组,这可能是其感官品质优于其他热杀菌组的内在机制。

图3 应用GC-O技术鉴定不同热杀菌米酒中香气化合物的香气强度

Fig.3 Aroma intensities of aroma compounds in different heat sterilization rice wine identified by GC-O technique

2.2.2 朝鲜族传统米酒活性香气物质的OAV分析

为量化各物质对整体香气的贡献程度,进一步计算了其OAV。4个米酒样品中分别有14、15、14、15种化合物的OAV≥1[见电子版增强出版附表1(https://doi.org/10.13995/j.cnki.11-1802/ts.044320),下同],证实其对香气具有实质贡献。其中,己酸乙酯(OAV:10.6~24.2)与丁酸异戊酯(OAV:28.3~75.2)的OAV远大于10,且与GC-O分析中的高香气强度高度一致,表明二者是主导米酒整体香气轮廓的最关键化合物。值得注意的是,2-甲基丁酸乙酯虽然浓度较低,但因气味阈值极低[(1.57 (μg/L)]而产生高OAV(7.4~30.9),同样被鉴定为关键组分。所有关键香气化合物的化学结构、香气特征描述及在未杀菌样品中的含量信息汇总如附表2所示。

表2 单体缺失模型

Table 2 Omission model

模型缺失物质n显著性M1醇类8∗∗M1-1异戊醇5—M1-2正庚醇6∗M1-31-壬醇8∗∗M1-4苯乙醇6∗M1-5正己醇4—M2酯类9∗∗M2-1乙酸乙酯5—M2-2丁酸乙酯8∗∗M2-32-甲基丁酸乙酯7∗M2-4乙酸异戊酯6∗M2-5己酸乙酯10∗∗∗M2-6丁酸异戊酯9∗∗∗M2-7乙酸叶醇酯5—M2-8辛酸乙酯6∗M3杂环类7∗M3-12-戊基呋喃7∗

注:n为10名感官评价员中,通过三角实验准确识别出缺失单体样品与全组分重构样品存在差异的人数;显著性差异为缺失单体样品与全组分重构样品的感官识别结果对比,采用二项式检验分析,*表示差异显著(P<0.05),**表示差异极显著(P<0.01),***表示差异极显著(P<0.001),—表示未达到显著水平(P>0.05)。

2.3 朝鲜族传统米酒关键呈香物质验证

2.3.1 香气重组实验

为验证OAV与GC-O筛选的高活性香气化合物是否为关键组分,以感官最优的UB菌米酒为参照开展香气重组实验。在基质模拟体系中添加UB组样品中14种OAV>1的化合物(浓度与原始样品一致),构建重组模型。经专业感官员采用描述性分析法评估,独立样本t检验显示重组模型与UB组样品在所有香气属性上均无显著性差异(P>0.05)。

香气重组模型的风味剖面如图4所示,其与UB组米酒的香气轮廓高度吻合,各属性间无显著性差异(P>0.05)。该结果证实,所筛选的14种关键香气化合物足以准确重构朝鲜族米酒的整体香气特征。尽管重组模型的香气强度略有弱化,但仍成功验证了前期关键香气物质鉴定与定量结果的可靠性。

图4 UB组及香气重组体系的香气剖面图

Fig.4 Aroma profile of UB and the complete aroma recombinate

2.3.2 单体缺失试验

为量化关键香气化合物的贡献度,基于香气重组模型构建17个缺失模型(三类化合物整组缺失和14种单体缺失)。经10名感官评价员三角测试,结果如表2显示。

酯类、醇类及杂环类缺失模型(M1~M3)与重组模型存在显著差异,证实其对米酒整体香气具有不可替代性;己酸乙酯与丁酸异戊酯缺失模型(M2-5,M2-6)识别率100%(P<0.001),二者为果香属性核心贡献组分;正庚醇、苯乙醇等6种单体缺失引发显著差异(P<0.05);1-壬醇、丁酸乙酯缺失导致极显著差异(P<0.01);异戊醇、正己醇等4种化合物缺失亦产生显著差异,进一步确证其关键香气地位。

该“筛选—验证”体系成功解析了朝鲜族米酒特征香气的化合物组成及其贡献层级,证实了GC-O与OAV联用技术用于关键香气物质鉴定的可靠性。

2.4 朝鲜族传统米酒关键呈香物质与香气属性相关性分析

香气属性、关键香气化合物之间的偏最小二乘回归(partial least squares regression,PLSR)相关性如图5所示,在PLSR相关性载荷图里,内椭圆与外椭圆分别对应50%和100%的方差贡献率。PC1与PC2对香气化合物变量(x)的解释度为97%,对香气属性及样品变量(y)解释度为48%。所有变量位于50%/100%方差椭圆交点,证实模型可靠性;UB与LT组位于PC1/PC2正象限,与谷物香、甜香、果香及多数关键化合物正相关;PAS组处于PC1正/PC2负象限,与醇香、花香及4种化合物正相关;UHT组位于双负象限,与异味潜在相关,但与关键化合物关联弱;正庚醇、丁酸乙酯等8种化合物(编号2、4、5、6、7、8、9、11)显著驱动果香与甜香属性(P<0.01)。该结果与感官评价及GC-O分析一致,确证14种关键化合物对米酒香气轮廓的核心贡献[19]

1-异戊醇;2-正庚醇;3-1-壬醇;4-苯乙醇;5-正己醇;6-乙酸乙酯;7-丁酸乙酯;8-2-甲基丁酸乙酯;9-乙酸异戊酯;10-己酸乙酯;11-丁酸异戊酯;12-乙酸叶醇酯;13-辛酸乙酯;14-2-戊基呋喃。

图5 不同米酒样本、香气属性、关键香气化合物之间的PLSR相关性载荷图

Fig.5 PLSR correlation loading diagram of different rice wine samples, aroma properties, and key aroma compounds

2.5 朝鲜族传统米酒热杀菌后挥发性物质差异分析

2.5.1 GC-IMS分析

基于前期感官与OAV分析结果,选取感官表现最佳的LTST组米酒与风味基准UB组米酒进行对比,以精准定位热杀菌引发的风味差异。GC-IMS技术通过分离过程的多维信息解析挥发性有机物,单体(M)、二聚体(D)及多聚体(P)可形成特征信号峰[20-21]。三维图谱(附图1-A)显示,2组样品挥发性有机物分布相似但信号强度差异显著。差异谱图(附图1-B)中,红色(浓度>UB)与蓝色(浓度

指纹图谱对比(图6)进一步揭示,乙酸乙酯(D/M)、异丁醇(D)等都赋予了2种米酒花香、甜香、果香属性;UB组中己酸乙酯、丁酸异戊酯等(红色框)浓度更高,贡献果香、麦芽香、曲香;LTST组中富集冰醋酸、β-环柠檬醛等(黄色框),增强醋酸、谷物香。GC-IMS共鉴定41种挥发性有机物(含4种未定性物质),其中乳酸乙酯等5种组分仅被该方法检出,有效补充GC-MS数据。2组样品挥发性有机物种类相似而含量差异的结论与GC-MS结果一致。

图6 米酒样品挥发性化合物风味指纹谱图

Fig.6 Fingerprint profile of volatile compounds in rice wine samples

2.5.2 基于聚类热图与OAV热图对杀菌前后米酒风味差异组合分析

为系统解析LTST组对米酒挥发性风味物质的综合影响,本研究联合采用了无监督聚类分析(揭示相对含量差异)与OAV分析(揭示感官贡献差异),对UB与LTST组米酒样品进行比对。

基于GC-MS定量数据构建的聚类热图如图7-A所示,UB与LTST组样品实现了清晰分离(P<0.01),表明热杀菌处理显著改变了米酒挥发性物质的整体构成。各样本的三重生物学重复紧密聚类,证明了实验与分析方法具有良好的重现性。乙醇、己酸乙酯、丁酸乙酯等醇酯类物质呈高丰度表达,构成了米酒的基础风味骨架。值得注意的是,LTST组中出现了2-辛酮(桃香)、β-环柠檬醛(清香)等UB组中未检出的物质,这可能源于热处理衍生的美拉德反应或斯特雷克降解等途径;而UB组中特有的2-甲基丁醇(麦芽香)等物质则在LT组中消失,直观地展示了热杀菌对风味组成的重塑作用。

A-聚类热图;B-OAV热图分析

图7 两种米酒挥发性风味物质聚类热图与OAV热图分析

Fig.7 Clustering heatmap and OAV heatmap analysis of volatile flavor compounds in two rice wines

通过GC-MS、GC-IMS及GC-O分析发现,朝鲜族传统米酒整体风味中起关键作用的香气物质若出现减少甚至消失的情况,极有可能致使热杀菌处理后的米酒香气品质发生变化。基于此,筛选出15种关键香气物质并进一步计算其OAV[22],以此对比这些化合物在热杀菌处理后对朝鲜族传统米酒整体香气的贡献程度。如图7-B所示,利用热图将LTST组米酒样品及UB组米酒样品关键化合物的OAV可视化处理。图中的OAV在异戊醇、苯乙醇、正己醇、乙酸叶醇酯和2-戊基呋喃虽有所下降但变化不大,此外产生了未在UB组米酒样品中检测到的β-环柠檬醛,其他8种关键香气物质OAV均明显下降。己酸乙酯和丁酸异戊酯在2种样品中OAV最大,可能是朝鲜族传统米酒风味最典型的香气成分来源。

2.6 OPLS-DA建模与筛选最优热杀菌米酒潜在差异标志物

图8为采用OPLS-DA模型分析[23]热杀菌处理对15种关键香气化合物的影响。模型参数显示,自变量拟合度(R2X=0.983)、因变量拟合度(R2Y=0.999)及预测能力(Q2=0.996)均显著优于阈值(0.5),表明模型可靠[24]。散点图(图8-A)证实UB组与LT组完全分离,与聚类热图结论一致。置换检验(图8-B)中Q2回归线负向截距(P<0.001),排除过拟合风险[25]。同时,OPLS-DA后可得出一个变量投影重要性(variable importance in projection,VIP)值,某组分VIP值越大,则说明对该样品所具有的贡献度越大。基于变量投影重要性(VIP>1)筛选出2种核心差异化合物:丁酸异戊酯与己酸乙酯(VIP>1,图8-C)[26]。结合GC-O与OAV分析,二者含量在LTST组显著降低(P<0.01),确认为热杀菌引发风味劣变的核心驱动因子。

A-OPLS-DA得分图;B-置换检验图;C-VIP值得分图

图8 UB与LTST组米酒挥发性风味化合物的OPLS-DA得分图、置换检验图和VIP值得分图

Fig.8 OPLS-DA score plot, permutation test plot, and VIP score plot of volatile flavor compounds in UB and LTST ricewine

2.7 朝鲜族传统米酒热杀菌处理后基本理化指标变化

由表3可知,LTST组米酒理化特性发生显著改变,其pH值自4.15降至3.88,总酸含量由1.12 g/L升至1.37 g/L,可能因为热效应促进有机酸(乳酸、富马酸等)电离释放H+[27];酯类化合物水解生成羧酸[28];由于酒精挥发导致酒精度降低2%vol;可溶性固形物含量自7 °Bx降至6 °Bx,因为糖类热分解转化为酸/醇类化合物导致[29],水分蒸发影响次之。

表3 米酒热杀菌前后基本理化指标变化

Table 3 Changes in physicochemical indexes of rice wine after thermal sterilization

基本理化指标UB组米酒LTST组米酒pH值4.15±0.11a3.88±0.06b总酸/(g/L)1.12±0.05b1.37±0.07a酒精度/%vol 3±0.00 1±0.00糖度/°Bx 7±0.006±0.00

注:不同字母代表样品之间存在显著性差异(P<0.05)。

2.8 朝鲜族传统米酒热杀菌处理后氨基酸变化

为探究热杀菌对风味前体物质的影响,分析了米酒中氨基酸组成的变化。UB组米酒共检出18种氨基酸,总含量为(2.684±0.150) mg/mL,其中谷氨酸、亮氨酸、丙氨酸及脯氨酸是主要组分,占总量的47.66%。经LTST热处理后,总氨基酸含量降至(2.408±0.106) mg/mL,但差异未达显著水平(P>0.1),表明该处理对氨基酸谱系的整体影响有限。然而,亮氨酸作为关键的支链氨基酸和香气前体,其含量发生了极显著的定向降解(从0.322 mg/mL降至0.202 mg/mL,P<0.05),丙氨酸、缬氨酸和脯氨酸的含量也显著下降[30](P<0.05)。亮氨酸的损失与热杀菌后关键酯类物质的减少趋势一致,印证了其作为重要风味前体的地位。各氨基酸组分含量的详细数据如附表3所示。

2.9 朝鲜族传统米酒热杀菌处理后有机酸变化

有机酸是米酒特征酸爽口感的重要贡献物质,同时可与醇类发生酯化反应,进一步生成对米酒核心香气具有关键贡献的酯类组分。实验分析了热杀菌前后有机酸的变化(附表4)。LTST组有机酸总量未发生显著波动(P>0.05)。但不同酸类的变化趋势各异:乳酸含量显著降低(从621.86 μg/mL降至600.22 μg/mL,P<0.05),这可能源于微生物活性被抑制以及其参与酯化反应被消耗[31];而酒石酸和柠檬酸的含量有所上升。该结果印证有机酸-酯类转化体系对米酒风味平衡的关键调控作用。

表4 亮氨酸添加量对热杀菌米酒挥发性化合物的影响 单位:μg/L

Table 4 Effect of leucine addition on volatile compounds in hot sterilized rice wine

化合物UBLTSTLTST+50 mg/L亮氨酸LTST+200 mg/L亮氨酸LTST+400 mg/L亮氨酸正庚醇34.63±2.45a24.89±2.17b26.17±1.33b31.23±1.89a17.74±2.37c苯乙醇585.61±17.64a517.24±16.82b536.21±16.21b572.92±15.11a532.14±16.15b丁酸乙酯179.06±5.24ab123.41±6.17c153.15±6.76bc168.33±5.95ab192.59±6.17a2-甲基丁酸乙酯11.86±1.55a8.17±1.71b8.99±1.20b10.97±1.07a7.23±1.27b乙酸异戊酯92.54±2.86a65.16±1.47b70.26±2.01b87.93±1.94a58.14±2.66c己酸乙酯1 272.52±168.81a872.47±134.01b935.54±116.93b1 163.49±117.34a652.15±105.63c丁酸异戊酯1 057.87±123.63a745.78±110.64c812.96±102.52bc973.96±129.42ab673.36±114.58c辛酸乙酯95.77±11.57a67.95±10.73b77.11±12.47b89.89±8.99a68.94±10.24b2-戊基呋喃52.90±3.01a38.97±4.08b43.37±3.63b49.96±3.86a37.96±4.21b

注:不同字母代表横向化合物含量之间存在显著性差异(P<0.05)。

2.10 朝鲜族传统米酒热杀菌处理关键香气属性恢复途径验证

基于前期发现亮氨酸在热杀菌过程中显著降解(P<0.01)且作为关键风味前体,本研究通过外源添加实验验证其对风味劣变的调控作用(图9)。GC-MS分析表明:200 mg/L亮氨酸使热杀菌米酒总离子流丰度显著提升,关键酯类(己酸乙酯、丁酸异戊酯等)含量增幅达峰值(P<0.01),添加400 mg/L亮氨酸时无进一步增益,表明存在非线性剂量效应;采用标准曲线法对这9种挥发性化合物进行定量分析,添加50 mg/L亮氨酸时仅丁酸乙酯显著增加(P<0.05);添加200 mg/L亮氨酸时9种OPLS-DA筛选的关键劣变关联物质同步提升;同时添加200 mg/L亮氨酸组的果香属性评分显著高于对照组且与其他添加组间存在极显著差异(P<0.001),与化合物增量趋势一致(图10)。该结果证实亮氨酸可通过剂量依赖模式调控酯类合成,进而改善热杀菌所致风味损失。

图9 UB组、LTST组及亮氨酸添加组的总离子流图对比

Fig.9 Comparison of total ion flow pattern among UB, LTST, and leucine addition group

图10 亮氨酸添加量对果香属性强度的影响

Fig.10 Effects of leucine supplementation on the intensity of fruit aroma properties

注:红色虚线为未杀菌米酒果香属性强度,不同字母代表不同亮氨酸添加量之间存在显著性差异(P<0.05)。

外源补偿实验揭示,亮氨酸的作用可能超越其作为直接前体的角色。从表4可以观察到,补充亮氨酸不仅恢复了其直接衍生物丁酸异戊酯,还同步提升了己酸乙酯、辛酸乙酯等中链脂肪酸乙酯的含量。这表明亮氨酸可能扮演着更广泛的代谢调控因子角色。有研究表明,亮氨酸降解产生的α-酮异己酸可进入中心碳代谢,间接影响脂质代谢和酰基-辅酶A库的大小,从而为多种酯类的合成提供充足前体[32]。支链氨基酸及其α-酮酸可能反馈调节或激活酯合成关键酶(如醇乙酰基转移酶)的活性[33]。尽管其具体调控机制在米酒体系中尚不明确,但本研究中观察到的多种酯类协同增加现象支持了这一推测。因此,本研究不仅证实了亮氨酸的补偿效应,也揭示了其在香气形成链条中的核心地位[34]

3 结论与讨论

热杀菌对朝鲜族传统米酒香气劣变的分子机制可归因于氨基酸降解与酯类合成阻断的协同作用。本研究发现亮氨酸在LTST处理后显著下降(P<0.05),与己酸乙酯、丁酸异戊酯等关键酯类含量同步减少,二者呈显著正相关。结合氨基酸→高级醇→酯类的代谢通路推演,亮氨酸可经转氨基作用生成α-酮异己酸,后者再通过丙酮酸脱羧酶和醇脱氢酶途径还原形成异戊醇,异戊醇最终在醇乙酰基转移酶催化下与酰基-辅酶A酯化生成丁酸异戊酯[35]。因此,亮氨酸降解不仅与酯类损失在统计学上相关,也在代谢机制上具备合理性支撑。

本研究的重要进展在于超越了“前体-产物”的简单相关,通过外源添加实验揭示了亮氨酸可能扮演的多重角色。补充亮氨酸(200 mg/L)不仅特异性恢复了丁酸异戊酯的含量,还协同提升了己酸乙酯、辛酸乙酯等多种中链脂肪酸乙酯的水平,并显著改善了整体果香感知。这一结果表明,亮氨酸很可能兼具“代谢前体”与“潜在调控因子”的双重功能:其一,作为合成异戊醇的直接前体;其二,其代谢流可能通过一些特定方式,广泛调控酯类的生物合成网络。这种剂量依赖性的调控效应为理解发酵食品风味代谢提供了新视角。

多维结果之间形成了闭环验证:GC-O与OAV分析首次筛选出己酸乙酯和丁酸异戊酯为关键香气物质,香气重组/缺失实验进一步证实其缺失会显著削弱果香;OPLS-DA建模将二者识别为VIP>1的差异标志物,提示其为风味劣变的主要驱动因子;GC-IMS/GC-MS热图及指纹图同样表明未杀菌组二者丰度更高,与感官果香属性保持一致;外源亮氨酸添加实验最终实现了对关键劣变物质的定向恢复。由此,本研究通过感官评价-化学定量-多元统计-代谢推演-前体验证的多层级交叉整合,系统揭示了热杀菌诱导香气劣变的机制,并提出以氨基酸前体补偿为核心的品质恢复路径,为传统发酵食品的温和杀菌工艺优化提供科学依据[36]

参考文献

[1] HE Y, WANG X Y, LI P H, et al.Research progress of wine aroma components:A critical review[J].Food Chemistry, 2023, 402:134491.

[2] YANG Y J, XIA Y J, WANG G Q, et al.Effects of boiling, ultra-high temperature and high hydrostatic pressure on free amino acids, flavor characteristics and sensory profiles in Chinese rice wine[J].Food Chemistry, 2019, 275:407-416.

[3] SUN R X, XING R R, ZHANG J K, et al.Metabolomic profiles of not from concentrate orange juice after different sterilization treatments based on HS-SPME-GC-MS and UPLC-QTOF-MS[J].Journal of Food Science, 2023, 88(5):1954-1968.

[4] 王玉. 酯类化合物在啤酒酿造过程中风味演变的研究[D].济南:齐鲁工业大学,2024.WANG Y.Study on the flavor evolution of ester compounds during beer brewing[D].Jinan:Qilu University of Technology, 2024.

[5] 熊怡婷, 朱韵琴, 陈磊, 等.外源亮氨酸对发酵香肠品质的影响[J].食品与发酵工业, 2025, 51(3):104-112.XIONG Y T, ZHU Y Q, CHEN L, et al.Effect of exogenous leucine on quality of fermented sausage[J].Food and Fermentation Industries, 2025, 51(3):104-112.

[6] SHI H Q, LI J J, ZHANG Y J, et al.Effect of wheat germination on nutritional properties and the flavor of soy sauce[J].Food Bioscience, 2022, 48:101738.

[7] 刘浩, 赵生满, 任贵兴.顶空固相微萃取结合气质联用分析小米黄酒与黍米黄酒的香气成分[J].酿酒科技, 2015(1):115-119;123.LIU H, ZHAO S M, REN G X.Analysis of flavoring components of yellow rice wine made by millet or husked millet by head-space solid phase micro-extraction coupled with gas chromatography-mass spectrometry[J].Liquor-Making Science &Technology, 2015(1):115-119;123.

[8] GUAN L N, MI Y J, ZHANG M, et al.Construction of aroma association network of cooked rice based on gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS) and sensory analysis[J].Flavour and Fragrance Journal, 2024, 39(1):45-57.

[9] 苏佳佳. 糙米酒酿制备工艺及其品质特性研究[D].无锡:江南大学,2020.SU J J.Study on preparation technology and quality characteristics of brown rice wine[D].Wuxi:Jiangnan University, 2020.

[10] 关丽娜, 叶国栋, 张敏, 等.籼稻米饭关键香气成分鉴定及感官特性形成分析[J].浙江大学学报(农业与生命科学版), 2024, 50(3):431-442;454.GUAN L N, YE G D, ZHANG M, et al.Identification of key aroma compounds and formation of sensory properties in cooked indica rice[J].Journal of Zhejiang University (Agriculture and Life Sciences), 2024, 50(3):431-442;454.

[11] WENG W Y, WANG Y X.Partial characterization and primary structure of collagen subunits from golden pompano skins[J].Process Biochemistry, 2018, 70:98-103.

[12] 田亚. 贵州米酸汤优势微生物与品质特性的相关性研究[D].贵阳:贵州大学,2020.TIAN Y.Study on the correlation between the dominant microorganisms and quality characteristics of guizhourice sour soup[D].Guiyang:Guizhou University, 2020.

[13] 孔芳, 张南海, 荆晓萱, 等.不同窖藏时间丹溪红曲酒活性成分及抗氧化评价[J].中国农业大学学报, 2022, 27(11):217-227.KONG F, ZHANG N H, JING X X, et al.Assessment of active components and antioxidant activity of different storage times of Danxi Hongqu rice wines[J].Journal of China Agricultural University, 2022, 27(11):217-227.

[14] VERMA D K, SRIVASTAV P P.A paradigm of volatile aroma compounds in rice and their product with extraction and identification methods:A comprehensive review[J].Food Research International, 2020, 130:108924.

[15] CHEN D, DONG H L, ZHUANG L Y, et al.Multi-omics approach reveals differences in aroma and metabolic characteristics of two types of jackfruits[J].Food Chemistry:X, 2025, 29:102806.

[16] LIU H Y, ZHANG M H, SU M S, et al.Multidimensional analysis of the flavor characteristics of yellow peach at different ripening stages:Chemical composition profiling and sensory evaluation[J].Food Chemistry, 2025, 471:142772.

[17] YANG Y J, XIA Y J, WANG G Q, et al.Comparison of oenological property, volatile profile, and sensory characteristic of Chinese rice wine fermented by different starters during brewing[J].International Journal of Food Properties, 2017, 20(sup3):S3195-S3211.

[18] YANG Y J, AI L Z, MU Z Y, et al.Flavor compounds with high odor activity values (OAV>1) dominate the aroma of aged Chinese rice wine (Huangjiu) by molecular association[J].Food Chemistry, 2022, 383:132370.

[19] TANG A X, PENG B Z.Uncovering the flavor differences between black rice wine and glutinous rice wine by GC-MS, GC-IMS, HPLC, and electronic sensory analysis[J].Food Bioscience, 2024, 60:104235.

[20] LI H M, JIANG D Q, LIU W L, et al.Comparison of fermentation behaviors and properties of raspberry wines by spontaneous and controlled alcoholic fermentations[J].Food Research International, 2020, 128:108801.

[21] 罗杨, 冯涛, 王凯, 等.基于GC-IMS分析不同成熟度百香果挥发性有机物的差异[J].食品工业科技, 2022, 43(15):321-328.LUO Y, FENG T, WANG K, et al.Analysis of difference volatile organic compounds in passion fruit with different maturity via GC-IMS[J].Science and Technology of Food Industry, 2022, 43(15):321-328.

[22] 麻龙花, 陈峰, 孟庆然, 等.HS-SPME结合GC-MS/GC-O法分析致中和五加皮酒的特征香气成分[J].酿酒科技, 2021(1):92-101.MA L H, CHEN F, MENG Q R, et al.Characterization of volatile components in zhizhonghe Wujiapi medicinal liquor by HS-SPME/GC-MS/GC-O[J].Liquor-Making Science &Technology, 2021(1):92-101.

[23] 谭凤玲, 詹萍, 王鹏, 等.基于感官评价及GC-MS结合OPLS-DA分析热杀菌对蟠桃汁呈香品质的影响[J].中国农业科学, 2022, 55(12):2425-2435.TAN F L, ZHAN P, WANG P, et al.Effects of thermal sterilization on aroma quality of flat peach juice based on sensory evaluation and GC-MS combined with OPLS-DA[J].Scientia Agricultura Sinica, 2022, 55(12):2425-2435.

[24] YUN J, CUI C J, ZHANG S H, et al.Use of headspace GC/MS combined with chemometric analysis to identify the geographic origins of black tea[J].Food Chemistry, 2021, 360:130033.

[25] 黄浩, 余鹏辉, 赵熙, 等.不同季节保靖黄金茶1号工夫红茶挥发性成分的HS-SPME-GC-MS分析[J].食品科学, 2020, 41(12):188-196.HUANG H, YU P H, ZHAO X, et al.HS-SPME-GC-MS analysis of volatile components of congou black tea processed from Baojing Huangjincha 1 from different harvesting seasons[J].Food Science, 2020, 41(12):188-196.

[26] 李祥雨, 熊雅婷, 滕建文, 等.基于气相色谱-质谱技术与多元统计分析咸蛋黄热加工中的异味组分[J].食品科学, 2023, 44(16):292-300.LI X Y, XIONG Y T, TENG J W, et al.Analysis of odor components in salted egg yolk during thermal processing using gas chromatography-mass spectrometry and multivariate statistical analysis[J].Food Science, 2023, 44(16):292-300.

[27] WU X Q, ZHANG Y Z, ZHONG Q P.Optimization of the brewing conditions of shanlan rice wine and sterilization by thermal and intense pulse light[J].Molecules, 2023, 28(7):3183.

[28] 孙淑夷. 荔枝汁混菌发酵工艺及其功能活性成分研究[D].广州:华南农业大学,2016.SUN S Y.The research of technology and functional active ingredients forlitchi juice mixed strains fermentation[D].Guangzhou:South China Agricultural University, 2016.

[29] AGCAM E.A kinetic approach to explain hydroxymethylfurfural and furfural formations induced by Maillard, caramelization, and ascorbic acid degradation reactions in fruit juice-based mediums[J].Food Analytical Methods, 2022, 15(5):1286-1299.

[30] 王辙远, 张璠璠, 于晓涛, 等.地龙提取物制备工艺优化对其抗凝血作用及氨基酸含量的影响[J].新中医, 2022, 54(14):1-6.WANG Z Y, ZHANG F F, YU X T, et al.Effects of preparation process optimization of earthworm extract on its anticoagulation and amino acid content[J].New Chinese Medicine, 2022, 54(14):1-6.

[31] LEE G I, LEE H M, LEE C H.Food safety issues in industrialization of traditional Korean foods[J].Food Control, 2012, 24(1-2):1-5.

[32] ROSSOUW D, BAUER F F.Exploring the phenotypic space of non-Saccharomyces wine yeast biodiversity[J].Food Microbiology, 2016, 55:32-46.

[33] CHEN D, CHIA J Y, LIU S Q.Impact of addition of aromatic amino acids on non-volatile and volatile compounds in lychee wine fermented with Saccharomyces cerevisiae MERIT.ferm[J].International Journal of Food Microbiology, 2014, 170:12-20.

[34] 李东娜. 基于代谢组学的非酿酒酵母与酿酒酵母协同发酵白果米酒的研究[D].上海:上海应用技术大学,2021.LI D N.Co-fermention of Ginkgo rice wine by non-Saccharomyces yeast and Saccharomyces cerevisiae based on metabonomics[D].Shanghai:Shanghai Institute of Technology, 2021.

[35] HAZELWOOD L A, DARAN J M, VAN MARIS A J A, et al.The Ehrlich pathway for fusel alcohol production:A century of research on Saccharomyces cerevisiae metabolism[J].Applied and Environmental Microbiology, 2008, 74(8):2259-2266.

[36] 谭凤玲. 蟠桃汁关键香气物质解析及杀菌汁呈香品质异化机制研究[D].西安:陕西师范大学, 2022.TAN F L.Analysis of key aroma compounds in peaches and research on the mechanism of aroma quality alteration in sterilized peach juice[D].Xi’an:Shaanxi Normal University, 2022.

Impact of thermal sterilization on key aroma compounds in Korean traditional rice wine and aroma quality recovery strategies

WANG Meiqi, XIONG Sirui, JIN Tieyan*

(College of Agriculture, Yanbian University, Yanji 133002, China)

ABSTRACT This study systematically evaluated the impact of heat sterilization at 65 ℃ for 5 min on the key aroma compounds of traditional Korean rice wine and investigated the role of exogenous leucine in aroma recovery.Quantitative descriptive analysis (QDA), gas chromatography-olfactometry (GC-O), odor activity value (OAV) calculation, and aroma recombination/omission tests were employed to identify key aroma components.GC-MS and orthogonal partial least squares-discriminant analysis (OPLS-DA) were applied to screen differential markers and monitor changes in amino acids and organic acids.Results showed that heat sterilization significantly reduced fruity aroma attributes (P<0.01).Ethyl hexanoate and isoamyl butyrate were identified as the core drivers of flavor deterioration.Leucine was significantly degraded during processing, showing a positive correlation with ester loss.Metabolic pathway analysis indicated that leucine participates in higher ester synthesis via the isoamyl alcohol pathway.Exogenous addition of 200 mg/L leucine significantly restored key ester contents and increased the fruity aroma score by 47.6% (P<0.001).Multidimensional results (GC-O, OAV, recombination tests, gas chromatography-ion mobility spectrometry, GC-MS, OPLS-DA) were highly consistent, establishing a complete verification process of “amino acid degradation-ester reduction- aroma decline”. This study revealed the molecular mechanism of heat-induced aroma deterioration in rice wine and proposed a precursor-compensation-based strategy for quality recovery, providing a theoretical basis and technical pathway for the industrialization of traditional fermented beverages and the optimization of mild sterilization processes.

Key words Korean traditional rice wine; thermal sterilization; odor activity value (OAV); flavour deterioration; leucine; quality recovery

DOI:10.13995/j.cnki.11-1802/ts.044320

引用格式:王美淇,熊思瑞,金铁岩.热杀菌对朝鲜族传统米酒关键香气物质的影响及品质恢复途径研究[J].食品与发酵工业,2026,52(10):344-354.WANG Meiqi,XIONG Sirui,JIN Tieyan.Impact of thermal sterilization on key aroma compounds in Korean traditional rice wine and aroma quality recovery strategies[J].Food and Fermentation Industries,2026,52(10):344-354.

第一作者:硕士研究生(金铁岩副教授为通信作者,E-mail:jintieyan@ybu.edu.cn)

收稿日期:2025-08-24,改回日期:2025-10-17