西梅(Prunus domestica L.)蔷薇科李属植物,属于呼吸跃变型果实,采摘后新陈代谢快,极易导致果实软化和腐败,又因西梅采收期集中在8~9月,产区采后腐烂率达35%~45%[1],严重制约西梅产业的发展。由于西梅采后常温下只能贮藏10 d左右,所以寻求适宜的保鲜技术具有重要的应用意义,目前常见的西梅采后物理方法包括近冰温贮藏[2]、空间静电场处理、短波紫外照射[3]等,化学法包括1-甲基环丙烯(1-methylcyclopropene,1-MCP)处理、采前喷施CaCl2处理[4]等,此外还有新型生物技术如甘氨酸甜菜碱-壳聚糖复合涂膜处理[5]等,但这些保鲜方法中存在成本较高、操作复杂等问题,因此研发简单高效的贮藏方法具有重要的现实意义。
臭氧(O3)是一种含三原子氧的高度不稳定分子,易释放单个氧原子,具有强氧化性,在空气中可分解为O2和氧原子。臭氧具有较强的杀菌作用,可通过作用于病原菌的细胞膜[6],改变细胞膜透性,破坏其组分,从而杀死微生物,适宜浓度的臭氧处理可减少果蔬贮藏期间营养物质消耗、促进抗氧化相关次生代谢物合成[7],从而减缓果实品质劣变、维持采后贮藏品质,是一种安全、高效、无污染的保鲜剂。乙烯作为一种内源植物激素,广泛参与植物的生长、发育、抗逆和次生代谢产物合成等生理过程的调控[8]。西梅属于呼吸跃变型果实,贮藏过程中由于内源乙烯浓度的增加引发呼吸跃变,进而加速果实成熟与软化,缩短贮藏期。因此抑制果实贮藏过程中的内源乙烯合成途径对延缓果实衰老、延长西梅贮藏期具有重要意义。
适宜浓度的臭氧处理可清除果蔬贮藏过程中产生的乙烯,并通过渗透和扩散进入到果实内,抑制乙烯合成酶1-氨基环丙烷-1-羧酸合成酶(ACC synthetase,ACS)活性,从而减少乙烯合成直接前体物质1-氨基环丙烷-1-羧酸(1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid,ACC)的产生,同时臭氧通过抑制1-氨基环丙烷-1-羧酸氧化酶(ACC oxidase,ACO)活性[9],阻断ACC向乙烯转化途径,降低果实内乙烯的浓度及氧化呼吸过程中产生的乙醇、乙醛等有害产物,缓解对细胞的损伤。臭氧可诱导果蔬表皮气孔缩小,从而抑制果实的呼吸作用及养分消耗,降低果蔬的呼吸高峰、失重率及腐烂率,维持贮藏品质,延缓果实衰老,并且不会对果实造成二次污染[10],目前广泛应用在果蔬采后贮藏。
本研究以‘法兰西’西梅为材料,采用不同浓度臭氧结合近冰温贮藏对西梅果实进行处理,通过测定西梅贮藏品质及乙烯合成前体物质蛋氨酸(methionine,Met)、S-腺苷蛋氨酸(S-adenosyl methionine,SAM)、ACC含量及关键限速酶ACS、ACO活性和乙烯释放量,筛选出最佳臭氧处理浓度,为臭氧处理西梅贮藏保鲜技术提供理论依据和实践指导。
本实验以喀什市疏附县‘法兰西’西梅为原材料,选取成熟度一致,可溶性固形物(total soluble solids,TSS)含量为(22.5±0.5)%,形状大小均匀,无机械损伤及病虫害的西梅进行实验。
NaOH、酚酞、聚乙烯吡咯烷酮、无水醋酸钠、KIO3、氯化汞,天津致远化学试剂有限公司;标准乙烯气体、标准氮气,天瑞达气体有限公司。
RC-4温度记录仪,江苏精创电气有限公司;GX16R高速冷冻离心机,湖南恒诺仪器设备有限公司;G5气相色谱仪、T 6紫外分光光度计,北京普析仪器有限责任公司;飞力FL-810SY臭氧发生机(臭氧发生量:10 g/h),深圳飞力电器科技有限公司;XD2-16RT-E PLC控制器,信捷电器股份有限公司。
1.3.1 处理方法
将西梅放置在(-1~-1.5 ℃)、相对湿度(80%~90%)的保鲜库内贮藏,分为不同臭氧浓度(0、64.2、96.3、128.4 mg/m3)组进行贮藏,每组称取20 kg(约700颗)西梅,置于塑料筐内,每框分装3 kg。使用臭氧发生机每隔15 d,通入不同浓度臭氧对西梅果实进行处理。
实验装置:为保证保鲜库(长×宽×高,4.5 m×3.5 m×3 m)内臭氧可均匀分布,在保鲜库内均匀安装4个臭氧监测器(监测精度:0.01 ppm)和4个轴流风机(单台风量:1 170 m3/h),如图1所示。控制系统设定:臭氧监测器数据和风机均连接至PLC控制器(显示分辨率:0.01 ppm),当任意2个臭氧监测器浓度误差超过限定值(±2 ppm)时,PLC将自动启动风机进行循环,设备可在启动10 min内消除浓度差异,使保鲜库空间内达到设定的臭氧浓度。
图1 臭氧浓度检测控制系统
Fig.1 Ozone concentration detection and control system
1.3.2 测定指标及方法
1.3.2.1 西梅果实结冰点的测定
参照崔宽波等[11] 的方法,将RC-4温度记录仪探头插入西梅果实中心,置于-35 ℃的冷冻箱中,每10 s自动记录1次温度数据,直至西梅果实完全冻结,绘制温度变化曲线图,以确定西梅果实的冰点温度,使用3颗西梅重复实验来确定果实结冰点。
1.3.2.2 西梅果实硬度的测定
采用GY-4果实硬度计测定,探头直径为3.5 mm,随机选择10个果实,沿果实赤道部位选取等距离3个位置进行测定,计算平均值,单位kg/cm2。
1.3.2.3 西梅果实TSS、可滴定酸(titratable acidity,TA)和抗坏血酸(ascorbic acid,AsA)含量的测定。
随机选择15个西梅果实,经混合研磨后形成均质浆液,TSS含量用PAL-1型数字式糖度仪测定,TA采用PAL-BX酸度计进行测定,每组重复3次,取平均值,单位%。
AsA含量测定,参照TURCS
NYI等[12]的方法进行测定:取1 g样品,加入2 mL 100 mmol/L HCl溶液,4 ℃下12 000×g离心25 min,收集上清液备用。取100 μL上清液与2 mL 100 mmol/L pH 6.0磷酸钾缓冲液和0.5 mL蒸馏水混匀,于265 nm波长测定吸光度,单位mg/100 g FW。
1.3.2.4 西梅果实失重率和呼吸速率测定
果实的失重率采用称重法测定,各处理组随机取1 kg西梅,每15 d称取并记录贮藏期间质量,各组处理重复3次,计算如公式(1)所示:
失重率![]()
(1)
呼吸强度参考曹建康等[13]的方法,采用静置法,将2 kg西梅放置在静置器中30 min,以每小时每千克西梅累积释放的CO2质量所表示,单位mg/(kg·h)。
1.3.2.5 西梅ACO、ACS活性测定
使用原鑫生物酶联免疫分析试剂盒进行测定,单位U/g FW。
1.3.2.6 西梅Met、SAM含量的测定
使用原鑫生物酶联免疫分析试剂盒进行测定,单位ng/g FW。
1.3.2.7 西梅ACC含量和西梅乙烯释放量的测定
西梅ACC含量使用原鑫生物酶联免疫分析试剂盒进行测定,单位ng/g FW。
乙烯释放量采用气相色谱法测定[14],称取2 kg西梅置于4 L密闭容器中2 h,收集1 mL顶气,利用气相色谱仪测定。色谱条件:porapak N(OD.3 nm×ID.2 nm×L.2 m)不锈钢填充柱:氢火焰离子化检测器(FLD)。载气,N2流速30 mL/min;燃气,H2流速30 mL/min; 空气流速300 mL/min。柱温50 ℃,进样口温度150 ℃,检测器温度250 ℃,进样量1 mL,单位μL/(kg·h)。
1.3.2.8 西梅抗氧化能力测定
测定西梅DPPH、ABTS抗氧化能力,采用苏州梦犀生物科技公司试剂盒测定,单位μmol Trolox/g FW。
采用Excel 2019处理数据,SPSS 26.0对数据进行单因素方差分析,P<0.05代表该指标存在显著性差异,使用Origin 2024绘图。
如图2所示,通过绘制西梅果实冰点曲线图可知,随着冷冻时间延长西梅果实中心温度下降至过冷点(-5.1 ℃),随后温度开始回升,这是由于西梅果实内部液态水向固态水转变,相变潜热释放[15],回升后的温度即为西梅冰点温度(-2.3 ℃)。在实验中为避免受到冷库波动造成果实冷害现象,所以近冰温贮藏温度设定为(-1~-1.5 ℃)。
图2 西梅冻结曲线
Fig.2 Prune freezing curve
西梅果实采收后硬度随着成熟过程逐渐降低,影响果实贮藏品质[16]。如图3所示,在贮藏前期0~15 d各臭氧处理组之间无显著性差异(P>0.05)均高于CK组,在30 d时各组硬度出现显著性差异(P<0.05)此时CK组硬度降幅最大,比15 d下降了13.75%,比96.3 mg/m3浓度臭氧处理组同期硬度低12.87%,贮藏45~60 d时64.2 mg/m3与96.3 mg/m3臭氧处理组之间无显著性差异(P>0.05),均高于CK组和128.4 mg/m3臭氧处理组。各组均在贮藏75 d开始急剧下降,在贮藏到120 d时96.3 mg/m3浓度臭氧处理组的硬度最高为12.62 kg/cm2,比同期CK组、128.4 mg/m3、64.2 mg/m3臭氧处理组分别高30.37%、10.12%、16.53%。这表明臭氧处理可抑制西梅果实的软化,并且96.3 mg/m3浓度臭氧处理组的效果较为显著。
图3 不同浓度臭氧处理对西梅果实硬度的影响
Fig.3 Effect of different concentrations of ozone treatment on the hardness of prune fruits
注:字母不同表示同一时间不同组间差异显著(P<0.05)(下同)。
TSS含量与果实品质和风味密切相关[17]。如图4-a所示,西梅果实TSS在贮藏前期呈上升趋势,这是由于果实贮藏期间发生呼吸跃变逐渐后熟,淀粉转化为糖类物质[18],后期下降是因为贮藏期西梅通过消耗营养物质从而维持生理代谢,造成果实软化。贮藏前期15 d时96.3 mg/m3臭氧处理组的TSS含量最高为23.40%,比同期CK组和128.4 mg/m3臭氧处理组分别高2.05%、6.12%。在贮藏结束120 d时,各组TSS含量从高到低分别为:96.3 mg/m3、128.4 mg/m3、64.2 mg/m3、CK组,其中96.3 mg/m3浓度臭氧处理组的含量是CK的1.05倍。TA含量可作为果实风味和品质判定的指标之一[19],TA与可溶性糖共同决定果实的固酸比,直接影响果实的甜酸平衡和整体适口性。由图4-b可知,各组的TA含量随贮藏时间的延长整体表现出下降的趋势,不同浓度臭氧处理组的TA含量始终高于CK组。贮藏45 d时各组差异最为显著(P<0.05),此时128.4 mg/m3臭氧处理组TA与其他组相比最高为1.06%,比同期CK组高34.18%(P<0.05),这主要因为高浓度的臭氧会造成氧化胁迫,加速果实的呼吸跃变进程,促进其后熟作用,从而导致TA含量升高。在120 d贮藏结束时,96.3 mg/m3与128.4 mg/m3浓度臭氧处理组TA含量高于64.2 mg/m3处理组和CK组,并与这2组呈显著性差异(P<0.05)。这表明臭氧处理可延缓果实中TA的分解,保持西梅果实的风味。固酸比是评价果实的风味和成熟度的重要指标,在贮藏过程中TA被作为呼吸作用和能量代谢的底物所消耗,由于臭氧处理可通过抑制果实呼吸作用从而维持TA的含量,所以可以减缓固酸比的上升(图4-c所示)。在贮藏120 d时,CK组比64.2 mg/m3、96.3 mg/m3与128.4 mg/m3臭氧处理组固酸比分别高12.44%、19.20%、23.46%,由此可知臭氧处理可延缓西梅果实后熟及贮藏品质下降。
a-TSS含量;b-TA含量;c-TSS/TA;d-ASA含量
图4 不同浓度臭氧处理对西梅TSS、TA、TSS/TA、ASA含量的影响
Fig.4 Effects of different concentrations of ozone treatment on TSS,TA,TSS/TA,and ASA content of prunes
AsA是果实重要的营养物质,同时AsA作为抗氧化物质可直接清除果蔬细胞内的ROS,也是许多代谢途径中的辅酶和还原剂能减少氧化损伤,延缓果实采后褐变和衰老[20-21]。如图4-d所示,在贮藏期间西梅AsA含量总体呈下降趋势,贮藏前期96.3 mg/m3臭氧处理组含量显著高于CK组,且呈现显著性差异。但贮藏中期45~75 d AsA含量产生波动先上升后随着贮藏时间的延长而且降解,贮藏期AsA含量下降可能是臭氧激活了抗氧化系统,从而增加了AsA的分解,波动的原因可能是臭氧处理提高了谷胱甘肽还原酶及琥珀酸脱氢酶等酶活性,进而有利于AsA积累,这与李欣等[7]通过研究臭氧处理猕猴桃等出的结论类似。在贮藏到75 d后各组AsA含量逐渐减少,但96.3 mg/m3浓度臭氧处理组AsA含量始终维持在较高的水平。在贮藏末期120 d时96.3 mg/m3臭氧处理组比CK组高出了25.68%(P<0.05)。这说明臭氧处理可抑制AsA分解,且96.3 mg/m3浓度臭氧处理组效果最好。
呼吸强度是反映果实贮藏品质的重要指标,它与果实的后熟、衰老密切相关。如图5-a所示,在贮藏15 d时96.3 mg/m3和64.2 mg/m3处理组呼吸强度均比CK组低1.90%、2.18%,此时128.4 mg/m3浓度臭氧处理组呼吸强度显著增强比CK组高2.37%(P<0.05),这是因为高浓度的臭氧会对果实造成氧化胁迫,导致呼吸强度异常增大。CK组和64.2 mg/m3臭氧处理组均在60 d达到呼吸高峰,分别为11.28 mg/(kg·h)和10.95 mg/(kg·h),此时各组之间呈显著性差异(P<0.05)。贮藏75 d时,96.3 mg/m3臭氧达到峰值,为10.93 mg/(kg·h),比同期64.2 mg/m3和128.4 mg/m3处理组分别高2.63%、2.82%。实验结果表明不同浓度臭氧处理均可抑制西梅果实呼吸强度增加,推迟呼吸高峰的出现,从而延缓西梅果实后熟和衰老,延长西梅贮藏期。
a-呼吸强度;b-失重率
图5 不同浓度臭氧处理对西梅呼吸强度及失重率影响
Fig.5 Effect of different concentrations of ozone treatment on the respiratory intensity and weight loss rate of prune
果实在贮藏过程中由于水分蒸发和生理代谢需消耗自身的营养物质供能,因此造成果实失重,并伴随挥发性风味物质(如酯类、醛类)的流失,影响果实风味和品质[22]。如图5-b所示,贮藏期间西梅果实的失重率各组呈现上升趋势,在贮藏15 d时CK组与不同浓度臭氧处理组呈显著性差异(P<0.05),3组不同浓度臭氧处理组之间无显著性差异(P>0.05),在贮藏中期60 d时,各组失重率差异显著(P<0.05),此时128.4 mg/m3浓度臭氧处理组的失重率最高为3.01%,96.3 mg/m3浓度臭氧处理组的失重率最低,比同期128.4 mg/m3臭氧组低29.90%,在120 d贮藏结束时CK组显著高于臭氧处理组,失重率从高到低为CK组、64.2 mg/m3处理组、128.4 mg/m3处理组、96.3 mg/m3处理组,分别为4.80%、4.30%、4.10%、3.60%,CK组是96.3 mg/m3处理组的1.33倍。这表明果实在贮藏过程中臭氧处理可以抑制西梅呼吸速率、减缓水分的散失、维持贮藏品质。
综上所述,不同浓度的臭氧处理均可延缓西梅果实贮藏品质的降低,且96.3 mg/m3处理组效果最优,因此选择96.3 mg/m3的臭氧处理组作为最佳处理组用于后续的试验分析。
ACS、ACO是植物内源乙烯合成途径中的关键酶和限速酶[23],因此抑制ACS和ACO酶的活性,可降低ACC含量,抑制乙烯的生成,延缓果实后熟软化。
如图6-a所示,2组ACS活性呈先上升后下降趋势,贮藏30~45 d期间CK组ACS活性显著高于臭氧处理组分别是17.44%、29.38%(P<0.05),2组活性高峰出现在60 d且CK组比臭氧处理组高20.81%(P<0.05),贮藏后期75~90 d开始逐渐下降,且贮藏末期2组无显著性差异(P<0.05)。如图6-b所示,在贮藏前期15和30 d,CK组ACO活性比96.3 mg/m3臭氧处理组分别高10.00%、3.88%,CK组在60 d达到峰值。在贮藏45~75 d,CK组活性比臭氧处理组分别高22.22%、23.66%、5.88%且呈显著性差异(P<0.05),2组均在75 d后开始急剧下降。
a-ACS活性;b-ACO活性
图6 臭氧处理对西梅贮藏期ACS、ACO活性的影响
Fig.6 Effect of ozone treatment on ACS and ACO activities of prunes during storage period
注:*表示同一贮藏时间组间呈显著性差异(P<0.05)(下同)。
Met作为乙烯合成的前体物质,在S-腺苷甲硫氨酸合成酶(S-adomet synthetase,SAMS)作用下将Met转变为SAM,经过ACS合成酶作用下生成ACC,最终通过ACO氧化酶合成乙烯[24]。如图7-a所示,在贮藏期间西梅Met含量总体呈下降趋势,贮藏期间96.3 mg/m3臭氧处理组Met含量始终高于CK组。贮藏中期45~90 d,96.3 mg/m3臭氧处理组Met含量分别高于CK组10.83%、18.80%、8.37%、7.00%(P<0.05)。贮藏末期105~120 d 2组无显著性差异(P>0.05)。如图7-b所示,西梅贮藏期间SAM含量与Met变化趋势一致,在贮藏15~45 d时,96.3 mg/m3臭氧处理组SAM含量分别显著高于CK组4.92%、9.79%、11.58%(P<0.05),贮藏90~120 d期间,96.3 mg/m3臭氧处理组SAM含量分别始终高于CK组7.06%、10.85%、11.85%(P<0.05)。
a-Met含量;b-SAM含量
图7 臭氧处理对西梅贮藏期Met、SAM含量的影响
Fig.7 Effect of ozone treatment on Met and SAM content of prune during storage period
乙烯是果实成熟到衰老过程中重要的植物调控激素[25]。如图8-a所示,西梅贮藏期间ACC含量呈先上升后下降趋势,贮藏45 d,2组达到峰值,CK组比同期臭氧处理组高13.64%(P<0.05),贮藏60~90 d时,ACC含量维持较为稳定,且CK组含量均高于96.3 mg/m3臭氧处理组,贮藏末期105~120 d,2组ACC含量无显著性差异(P<0.05)。如图8-b所示,西梅贮藏期间乙烯释放量呈先上升后下降趋势,贮藏15~45 d乙烯释放量较为平稳,CK组分别比臭氧处理组高7.34%、26.77%、7.67%(P<0.05),2组乙烯释放量均在60 d达到峰值,CK组比同期臭氧处理组高15.21%(P<0.05),随后开始下降,2组贮藏末期105~120 d,CK组比96.3 mg/m3臭氧处理组乙烯释放量分别高12.62%、14.06%(P<0.05),呈显著性差异。
a-ACC含量;b-乙烯释放量
图8 臭氧处理对西梅ACC含量和乙烯释放量的影响
Fig.8 Effect of ozone treatment on ACC content and ethylene release from prunes
如图9-a所示,西梅贮藏前期15~45 d时,2组DPPH抗氧化能力无显著性差异,在第60天开始上升,贮藏75~90 d期间96.3 mg/m3臭氧处理组抗氧化能力分别显著高于CK组21.76%、14.36%(P<0.05),贮藏末期105~120 d,2组无显著性差异(P>0.05)。如图9-b所示,西梅贮藏期间ABTS抗氧化能力呈先上升后下降趋势,贮藏15 d CK组抗氧化能力比臭氧处理组高8.10%,2组在30 d开始上升,96.3 mg/m3臭氧处理组在75 d达到峰值比同期CK组高11.71%,贮藏后期90~120 d由于果实开始衰老,西梅抗氧化能力开始逐渐下降且无显著性差异(P>0.05)。
a-DPPH抗氧化能力;b-ABTS抗氧化能力
图9 臭氧处理对西梅DPPH、ABTS抗氧化能力的影响
Fig.9 Effect of ozone treatment on DPPH and ABTS antioxidant capacity of prune mume
果蔬在采后仍会进行旺盛的呼吸作用和新陈代谢,西梅果实采收后由于切断了来自母体的水分与养料的供应,贮藏期间通过消耗自身的营养物质[26],为果实的呼吸跃变准备能量,在此过程中会逐渐后熟同时产生大量乙烯,加速成熟和衰老并且伴随着水分流失、物质转化、抗逆响应等活动。
乙烯作为植物内源性二碳气体催熟激素,兼具响应逆境胁迫和调控果实成熟衰老的双重关键作用[27],在呼吸跃变型果实中内源乙烯的产生时间和代谢过程是调控果实后熟与软化进程的关键因素[28],研究表明,乙烯在果实贮藏过程中通过调控多聚半乳糖醛酸酶、果胶甲酯酶等细胞壁降解酶活性,促使可溶性果胶、纤维素降解,从而加速果实软化。另一方面,乙烯还可通过调控脂氧合酶活性,进而影响果实香气成分的表达[29],长期贮藏过程中会加速香气物质挥发,影响果实风味。因此,抑制内源乙烯的生物合成,是采后果实保鲜的关键点。内源乙烯通过增大果实液泡膜的透性,造成水解酶外渗[30],从而加强呼吸强度,引起果实内有机物转化,促进淀粉物质转化为糖类物质。在贮藏期间果实通过分解代谢自身营养物质来维持生理活动,因此果实的硬度逐渐下降会出现软化现象,同时糖和酸的分解致使风味丧失,营养物质损耗等,造成贮藏期间西梅果实的感官品质与营养成分呈现下降趋势。董成虎等[31]研究发现,6.42 mg/m3的臭氧处理可延缓树莓硬度和可溶性固形物含量的下降,维持树莓的色泽品质并不会对树莓造成伤害。刘晨霞等[32]研究表明,14.89 mg/m3臭氧熏蒸处理能够降低双孢菇失重率,减少贮藏期间色差变化并降低褐变度。这是因为臭氧处理能够降低呼吸强度,减少水分蒸腾,另一方面臭氧通过渗入细胞后产生负氧离子,可抑制糖代谢和组织代谢,进而延缓果实衰老进程,这与本实验的结果一致。
植物体内的乙烯由Met衍生而来,Met作为乙烯合成前体物质,在SAMS催化下生成SAM[33],SAM在ACC合成酶(ACS)的作用下裂解生成ACC和5′-甲硫腺苷(5′-methylthioadenosine,MTA),MTA会被进一步水解为5′-甲硫核糖(5′-methylthioribose,MTR),并通过甲硫氨酸途径重新合成Met[34],而ACC作为合成乙烯的直接前体物质在ACO的氧化作用下生成乙烯、CO2及氰化物。ACS和ACO作为植物乙烯生物合成的限速酶,在调节乙烯生物合成中起关键作用。在本实验中研究发现臭氧通过抑制乙烯生物合成中ACS、ACO活性,从而降低底物利用率,导致中间产物SAM、ACC积累,减缓Met向乙烯转化途径,另一方面臭氧作为强氧化剂可将贮藏过程中果蔬产生的乙烯氧化为CO2和H2O,减少在贮藏过程中乙烯的积累。苏苗[35]研究发现O3处理可抑制ACC含量的积累,增加ACC向1-(丙二酰氨基)环丙烷-1-羧酸途径的转化,从而减少了乙烯的释放。此外臭氧处理可通过调控抗氧化代谢酶活性,诱导轻度氧化应激,激活防御响应,提高果实的抗氧化能力,本实验通过测定DPPH、ABTS两个抗氧化能力评价指标,发现臭氧处理可以提高DPPH、ABTS抗氧化能力,提高果实的抗逆性。
本研究通过使用(0、64.2、96.3、128.4 mg/m3)臭氧对果实进行处理,实验结果表明96.3 mg/m3臭氧处理可延缓西梅果实软化、抑制呼吸高峰的出现,延缓TSS、TA和AsA含量降解以及失重率的上升,同时抑制乙烯合成酶ACS、ACO活性,减少乙烯释放量,提高西梅抗氧化活性,延缓果实衰老,维持西梅贮藏品质。
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