重组人Ⅲ型胶原蛋白的分离纯化

梁鑫1,2*,张仁怀3,吕自力1,艾华伟4,刘冬3,梁波3,单旭东1,陈浩然1

1(成都中医药大学 医学与生命科学学院,附属生殖妇幼医院,四川 成都,610041)2(四川省人口和计划生育科学研究所,四川 成都,610041)3(成都远睿生物技术有限公司,四川 成都,610000)4(河南多美康生物药业有限公司,河南 郑州,450000)

摘 要 利用分泌表达重组人Ⅲ型胶原蛋白的毕赤酵母发酵液,通过层析条件的优化,建立了重组人Ⅲ型胶原蛋白一步层析纯化工艺。发酵液以硫酸铵(30%饱和度)沉淀胶原蛋白,沉淀用超纯水复溶后超滤转换介质至20 mmol/L 磷酸缓冲液(phosphate buffer,PB)(pH 6.0),然后用SP Sepharose HP阳离子交换柱进行纯化,以20 mmol/L PB (pH 6.0)-150 mmol/L NaCl洗涤杂蛋白,以20 mmol/L PB (pH 6.0)-250 mmol/L NaCl洗脱重组人Ⅲ型胶原蛋白。采用该工艺对60 L发酵液进行重组人Ⅲ型胶原蛋白的纯化,产品纯度97.7%,总回收率68.8%,纯化的重组人Ⅲ型胶原蛋白纯度高,热原含量低,可用于医药领域。该研究建立了一步层析法从毕赤酵母发酵液中高效制备重组人Ⅲ型胶原蛋白的纯化工艺,工艺简便、稳定可靠,离子交换层析放大容易,为重组人Ⅲ型胶原蛋白的工业化生产奠定了基础。

关键词 毕赤酵母;重组人Ⅲ型胶原蛋白;盐析;阳离子交换层析

胶原蛋白是脊椎动物的主要结构蛋白,广泛分布于动物结缔组织、韧带、跟腱等,约占生物体自身总蛋白含量的30%,皮肤干重的3/4[1]。同时,参与细胞的增殖、分化与迁移,使骨、腱、软骨和皮肤具有一定机械强度[2]。因具有其他合成材料无法比拟的生物相容性、可生物降解性以及可大规模生产的可行性等优点,胶原蛋白广泛应用于健康食品、化妆品、生物材料和医药工业[3-5]

目前,胶原蛋白的生产方法主要有:传统提取法、化学合成法、现代生物技术生产法[6-7]。传统提取法和化学合成法所获得的胶原蛋白活性较低,且带有安全隐患[8-9]。与动物来源的胶原蛋白相比,重组胶原蛋白具有更强的生物学活性、安全性、亲水性、可加工性和低免疫原性的特点[10-13]。已有多种通过基因工程技术生产重组人源性胶原蛋白的研究,涉及大肠杆菌、酵母、昆虫细胞、转基因作物、转基因小鼠等不同表达体系。因哺乳动物细胞、昆虫细胞、转基因小鼠等表达体系成本高、周期长,难以满足产业化需求,相比之下酵母和大肠杆菌表达系统具有成本低、速度快、技术相对简单、可进行高密度发酵等优点,是工业化生产的首选方式。

本研究利用酵母分泌表达获得重组人Ⅲ型胶原蛋白发酵液,以盐析沉淀和阳离子柱层析结合的方法,纯化出高纯度的重组人Ⅲ型胶原蛋白。该纯化工艺简便、稳定可靠,为其后续开发生产奠定了基础。

1 材料与方法

1.1 材料

重组人Ⅲ型胶原蛋白发酵液,由本实验室生产;XK 16/20层析柱、Capto SP impress(Capto SP)、SP Sepharose High Performance(强阳离子交换层析柱, SP HP)填料,GE healthcare公司;Cellufine MAX S-h(MAX S-h)、JNC corporation、SP Beads 6 FF,常州天地人和;重组人Ⅲ型胶原蛋白兔多抗,武汉博士德生物工程有限公司;驴抗兔HRP标记二抗,北京博奥森公司;其余化学试剂,成都市科龙化工试剂厂。

1.2 仪器与设备

AKTA pure System层析系统,GE healthcare公司;高速冷冻离心机,湖南湘仪仪器有限公司;电子天平,赛多利斯科学仪器有限公司;pH计,METTLER TOLEDO公司;电泳仪,BIO-RAD公司。

1.3 试验方法

1.3.1 重组人Ⅲ型胶原蛋白发酵液盐析

取离心过滤后发酵液,缓慢加入饱和硫酸铵,使其硫酸铵饱和度分别为15%、20%、30%。于室温下放置10 min,5 000 r/min离心3min,分别收集上清液及沉淀,进行十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)检测。

1.3.2 重组人Ⅲ型胶原蛋白阳离子交换层析缓冲条件筛选

配制pH为5.5的20 mmol/L柠檬酸盐缓冲液,pH为6.0和6.5的20 mmol/L磷酸缓冲液(phosphate buffer,PB),pH为8.0的20 mmol/L Tris缓冲液,分别以SP Beads 6F填料进行层析纯化。收集各步骤样品,进行SDS-PAGE检测。

1.3.3 重组人Ⅲ型胶原蛋白阳离子交换层析填料筛选

以20 mmol/L PB(pH 6.0)缓冲液,分别用Capto SP impress、MAX S-h、SP Beads 6FF、SP HP填料进行柱层析。收集各步骤样品,进行SDS-PAGE检测。

1.3.4 重组人Ⅲ型胶原蛋白阳离子交换层析洗脱条件摸索及验证

以20 mmol/L PB(pH 6.0)平衡阳离子交换层析柱,上样再平衡后,以NaCl浓度梯度进行洗脱,分步收集洗脱样品,进行SDS-PAGE电泳检测。确定最佳洗脱条件后,以该条件进行至少2次验证实验。

2 结果与分析

2.1 重组人Ⅲ型胶原蛋白硫酸铵盐析结果

为降低层析上样时间,采用盐析法沉降重组人Ⅲ型胶原蛋白,再以超纯水复溶,从而起到浓缩的作用,并对样品进行初步纯化。如图1所示,当硫酸铵饱和度达到20%时,发酵液开始出现沉淀,但沉淀不完全;当饱和度达到30%时,上清中重组人Ⅲ型胶原蛋白几乎完全沉淀。因此,后续纯化对样品的初处理采用30%饱和度的硫酸铵以沉淀并浓缩重组人Ⅲ型胶原蛋白。

M-蛋白质分子质量标准;1-发酵液上清;2-15%饱和度硫酸铵盐析上清;3、 4-20%饱和度硫酸铵盐析上清;5、 6-30%饱和度硫酸铵盐析上清图1 重组人Ⅲ型胶原蛋白硫酸铵盐析电泳图

Fig.1 SDS-PAGE of ammonium sulfate salting out results of recombinant human type Ⅲ collagen

2.2 pH对重组人Ⅲ型胶原蛋白阳离子交换层析的影响

利用不同的缓冲体系,对重组人Ⅲ型胶原蛋白在pH为5.5、6.0、6.5、8.0时进行阳离子交换层析的捕获情况进行研究。层析填料:MAX SH;样品:发酵液以30%饱和度硫酸铵盐析,沉淀用超纯水复溶后,对相应pH缓冲液透析;洗脱条件:0~1 mol/L NaCl线性梯度洗脱,出峰后分步收集。层析结果如图2所示,在碱性条件下,重组人Ⅲ型胶原蛋白未被捕获,而在酸性条件时,可被阳离子交换柱捕获。其中,pH为6.0时,流穿中重组人Ⅲ型胶原蛋白量最少,重组人Ⅲ型胶原蛋白损失最小。因此,选用pH 6.0的缓冲条件进行重组人Ⅲ型胶原蛋白的纯化。

M-蛋白质分子质量标准;1-上样前样品;2-层析穿透;3~13-分步收集样品A-pH 5.5柠檬酸盐缓冲液阳离子柱层析结果;B-pH 6.0磷酸盐缓冲液阳离子柱层析结果;C-pH 6.5磷酸盐缓冲液阳离子柱层析结果;D-pH 8.0 Trise缓冲液阳离子柱层析结果;图2 pH对重组人Ⅲ型胶原蛋白阳离子交换层析的影响

Fig.2 Effect of pH on cation exchange chromatography of recombinant human type Ⅲ collagen

2.3 阳离子交换层析填料的筛选

在研究了重组人Ⅲ型胶原蛋白最适捕获缓冲体系后,在该体系下进行适宜的阳离子交换填料的筛选。结果如图3所示,在pH 6.0的缓冲体系中,重组人Ⅲ型胶原蛋白与4种阳离子交换填料都能结合。其中MAX S-h和SP HP填料的分辨率高,对重组人Ⅲ型胶原蛋白的分离效果好,但是MAX S-h载量低,因此采用SP HP填料进行后续研究。

M-蛋白质分子量标准;1-上样前样品;2-层析穿透;3~16-分步收集样品A-重组人Ⅲ型胶原蛋白MAX S-h柱纯化结果;B-重组人Ⅲ型胶原蛋白SP beads 6FF柱纯化结果;C-重组人Ⅲ型胶原蛋白Capto SP柱纯化结果;D-重组人Ⅲ型胶原蛋白SP HP柱纯化结果图3 不同阳离子交换层析填料对重组人Ⅲ型胶原蛋白的分离

Fig.3 Separation of recombinant human type Ⅲ collagen with different cation exchange chromatography

2.4 重组人Ⅲ型胶原蛋白阳离子交换层析洗脱条件优化

在pH为6.0缓冲条件下,以SP HP阳离子交换层析对重组人Ⅲ型胶原蛋白进行纯化,并对洗脱条件进行研究。上样后,以0~1 mol/L NaCl线性梯度洗脱。结果如图4所示,分析纯化图谱A和电泳图B、C,洗脱峰p1、p3、p4的NaCl浓度分别为52、150、250 mmol/L。250 mmol/L NaCl洗脱的p4,为高纯度重组人Ⅲ型胶原蛋白。

A-重组人Ⅲ型胶原蛋白SP HP纯化层析图;B、 C-重组人Ⅲ型胶原蛋白SP HP纯化电泳图图4 SP HP阳离子交换层析柱线性梯度洗脱结果

Fig.4 Results of linear gradient elution in SP HP cation exchange chromatography

注:泳道上的数字为分步收集样品编号

根据上述结果,采用52、150、250 mmol/L NaCl进行阶段梯度洗脱,结果如图5所示,重组人Ⅲ型胶原蛋白在250 mmol/L NaCl条件下被洗脱下来,而52、150 mmol/L NaCl洗脱品为重组人Ⅲ型胶原蛋白的降解物。

M-蛋白质分子量标准;1-上样前样品;2-层析穿透;3、 4-52 mmol/L NaCl洗脱样;5-150 mmol/L NaCl洗脱样;6-250 mmol/L NaCl 洗脱样;7-1 mol/L NaCl清洗层析柱图5 重组人Ⅲ型胶原蛋白阳离子交换层析阶段梯度洗脱结果

Fig.5 Results of step gradient elution of cation exchange chromatography of recombinant human type Ⅲ collagen

采用优化后的层析工艺对60 L发酵液进行重组人Ⅲ型胶原蛋白的纯化,产品纯度97.7%,总回收率68.8%,如表1所示。

表1 重组人Ⅲ型胶原蛋白纯化工艺各步骤回收率

Table 1 Recovery rate of each step of the purification process of recombinant human type Ⅲ collagen

注:—表示无

工艺步骤蛋白量/g纯度/%回收率/%发酵液 48.672.9—硫酸铵沉淀 38.085.391.5阳离子交换层析24.997.768.8

2.5 重组人Ⅲ型胶原蛋白的鉴定

将纯化的蛋白采用免疫印迹进行鉴别实验,方法参见《中国药典》[14],证明其为重组人Ⅲ型胶原蛋白,结果如图6所示。

M-蛋白质分子量标准;1-重组人Ⅲ型胶原蛋白考马斯亮蓝染色;2-重组人Ⅲ型胶原蛋白免疫印迹图6 重组人Ⅲ型胶原蛋白免疫印迹检测及考马斯亮蓝染色对照

Fig.6 Immunoblotting and Coomassie brilliant blue staining of recombinant human type Ⅲ collagen

2.6 重组人Ⅲ型胶原蛋白的纯度分析

采用分子排阻高效液相色谱(size exclusion high performance liquid chromatography,SEC-HPLC)对纯化的重组人Ⅲ型胶原蛋白进行纯度分析,其纯度为97.7%,结果如图7所示。

图7 重组人Ⅲ型胶原蛋白SEC-HPLC分析

Fig.7 SEC-HPLC Analysis of recombinant human type Ⅲ collagen

3 讨论与结论

重组人Ⅲ型胶原蛋白在医药、保健、营养等方面具有重要的应用价值,对其开发生产具有巨大的市场价值。早期的重组胶原蛋白,多采用大肠杆菌表达,分离纯化工艺复杂,热原难以控制。王晓军等[15]从大肠杆菌中经阴离子交换和分子筛(Sephadex G-100)柱层析分离重组胶原蛋白,最终产物纯度达98%,回收率为80.5%。毕赤酵母由于既有原核微生物的特点,又有真核生物的特性,可以对目的蛋白进行糖基化、二硫键形成等翻译后修饰,近年来在胶原蛋白的表达中越来越受到青睐。周爱梅等[10]采用巴氏毕赤酵母分泌表达重组人源胶原蛋白,采用40%饱和度硫酸铵沉淀和Sephadex G-100纯化得到电泳重组人源胶原蛋白。但上述工艺中,由于分子筛柱层析费时少、处理量小,不利于产业化应用。

本研究建立了一步层析法从毕赤酵母发酵液中纯化重组人Ⅲ型胶原蛋白:发酵液以30%饱和度硫酸铵盐析沉淀重组人Ⅲ型胶原蛋白,沉淀用超纯水复溶后,对20 mmol/L PB(pH 6.0)超滤、转换介质,上阳离子交换柱SP HP,以20 mmol/L PB(pH 6.0)-150 mmol/L NaCl洗脱杂蛋白及降解的重组人Ⅲ型胶原蛋白,以20 mmol/L PB(pH 6.0)-250 mmol/L NaCl洗脱重组人Ⅲ型胶原蛋白。该纯化工艺简便,离子交

换层析放大容易,因此更便于产业化。纯化的高纯度、全分子重组人Ⅲ型胶原蛋白,热原含量低,可用于医药领域,如医用海绵、薄膜、缝合线等。

参考文献

[1] 蒋挺大.胶原与胶原蛋白[M].北京:化学工业出版社,2006:171-173.

[2] EXPOSITO J,VALCOURT U,CLUZEL C,et al.The fibrillar collagen family[J].International Journal of Molecular Sciences,2010,11(2):407-426.

[3] GELSE K,POSCHL E,AIGNER T.Collagens-structure,function, and biosynthesis[J].Advanced Drug Deliver Reviews,2003,55(12):1 531-1 546.

[4] YU X Y,TANG C E,XIONG S B,et al.Modification of collagen for biomedical applications: A review of physical and chemical methods[J].Current Organic Chemistry,2016,20(17):1 797-1 812.

[5] DESHMUKH S N,DIVE A M,MOHARIL R,et al.Enigmatic insight into collagen[J].Journal of Oral and Maxillofacial Pathology,2016,20(2):276-283.

[6] 李国英,张忠楷,雷苏,等.胶原、明胶和水解胶原蛋白的性能差异[J].四川大学学报,2005,37(4):54-58.

[7] PROCKOP D J,SIERON A L,LI S W.Procollagen N-proteinase and procollagen C-proteinase: Two unusual metalloproteinases that are essential for collagen processing probably have two important roles in development and cell signaling [J].Matrix Biology,1998,16(1):399-408.

[8] PINKAS D M,DING S,RAINES R T,et al.Tunable, post-translational hydroxylation of collagen domains in Escherichia coli[J]. ACS Chemical Biology,2011,6(4):320-324.

[9] 杨立霞,修建新,朱欣杰,等.重组生产胶原蛋白的研究进展.河北化工,2007,30(7):43-46.

[10] 周爱梅,张静,邓爱鹏,等.重组人源胶原蛋白的分离纯化及其结构表征[J].食品与发酵工业,2015,41(3):46-52.

[11] TOMITA M,MUNETSUNA H,SATO T,et al.Transgenic silkworms produce recombinant human type Ⅲ procollagen in cocoons [J].Natual Biotechnol,2003,21(1):52-56.

[12] WEGNER G H.Emerging applications of the methylotrophic yeasts [J].FEMS Microbiology Reviews,1990,7(3-4):279-283.

[13] KEIZERGUNNINK I,VUORELA A,MYLLYHARJU J,et al.Accumulation of properly folded human type Ⅲ procollagen molecules in specific intracellular membranous compartments in the yeast Pichia pastoris [J].Matrix Biology,2000,19(1):29-36.

[14] 国家药典委员会.中华人民共和国药典[M].北京:化学工业出版社,2005.

[15] 王晓军,惠俊峰,米钰,等.重组类人胶原蛋白的分离纯化.中国生物制品学杂志,2003,16(4):212-214.

Isolation and purification of recombinant human type Ⅲ collagen

LIANG Xin1,2*,ZHANG Renhuai3,LYU Zili1,AI Huawei4,LIU Dong3,LIANG Bo3,SHAN Xudong1,CHEN Haoran1

1(School of medical and life sciences,Reproductive & Women-Children Hospital, Chengdu University of Traditional Chinese Medicine, Chengdu 610041, China)2 (Sichuan Family Planning Research Institute, Chengdu 610041, China)3(Chengdu Farwits Biotechnology Co., Ltd., Chengdu 610000, China)4(Henan duomeikang Biological Pharmaceutical Co., Ltd., Zhengzhou 450000, China)

ABSTRACT The objective of this study was to establish a one-step chromatographic process, by optimizing the chromatographic conditions, for purifying recombinant human type Ⅲ collagen from Pichia pastoris fermentation broth. Collagen was precipitated from fermentation broth using 30% (mass fraction) saturated ammonium sulfate. Then, the medium was ultrafiltered to 20 mmol/L phosphate buffer (PB) (pH 6.0) after reconstitution of the precipitate with ultrapure water. Following this, a SP Sepharose HP cation exchange column was used for purification, and heteroproteins were washed with 20 mmol/L PB (pH 6.0)-150 mmol/L NaCl. Finally, recombinant human type Ⅲ collagen was eluted with 20 mmol/L PB (pH 6.0)-250 mmol/L NaCl. Using this process to purify recombinant human type Ⅲ collagen from 60 L fermentation broth, the harvested product had a purity of 97.7% and total recovery rate of 68.8%. The purified recombinant human type Ⅲ collagen exhibited high purity and low pyrogen content and thus can be used in medicine industry. This study established a one-step chromatography purification process for the efficient preparation of recombinant human type Ⅲ collagen from Pichia pastoris fermentation broth. The process is simple, stable, and reliable. Ion exchange chromatography is easy to scale up, laying a foundation for industrial production of recombinant human type Ⅲ collagen.

Key words Pichia pastoris; recombinant human type Ⅲ collagen; salting out; cation exchange chromatography

DOI:10.13995/j.cnki.11-1802/ts.023967

引用格式:梁鑫,张仁怀,吕自力,等.重组人Ⅲ型胶原蛋白的分离纯化[J].食品与发酵工业,2020,46(16):159-163.LIANG Xin,ZHANG Renhuai,LYU Zili, et al. Isolation and purification of recombinant human type Ⅲ collagen[J].Food and Fermentation Industries,2020,46(16):159-163.

第一作者:博士,副教授(本文通讯作者,E-mail:liangxin@cdutcm.edu.cn)

基金项目:四川省科技厅项目(2018YSZH0028);四川省卫生健康委课题(19PJ033);四川省中医药管理局中医药科研专项(2018JC010)

收稿日期:2020-03-17,改回日期:2020-04-20