液相色谱串联质谱法测定铝塑复合膜中芥酸酰胺和油酸酰胺

蒙芳玲1,2,胡长鹰1,3,黎梓城4,王志伟1,2*

1(暨南大学包装工程研究所,广东 珠海,519070)2(暨南大学 包装工程学院,广东 珠海,519070)3(暨南大学 食品科学与工程系,广东 广州,510632)4(广州海关技术中心国家食品接触材料检测重点实验室,广东 广州,510075)

摘 要 采用液相色谱-三重四极杆串联质谱法测定铝塑复合膜中芥酸酰胺(erucamide, EAD)和油酸酰胺(oleamide, OAD)的含量。该文在优化的质谱、色谱柱和流动相下,利用阳性铝塑复合膜来优化样品的前处理方法、提取溶剂、提取时间和提取次数,并检测市场上11种铝塑制品。结果表明,使用乙醇超声提取铝塑复合膜中的EAD和OAD60 min并重复提取2次,以纯甲醇为流动相通过Poroshell 120EC-C8(100 mm×3.0 mm, 2.7 μm)色谱柱进行分离效果最佳。EAD和OAD在0.1~3.0 mg/L线性良好,相关系数均>0.995,检出限均≤0.02 mg/L,定量限均≤0.05 mg/L,回收率为82%~116%,相对标准偏差(relative standard deviation,RSD)为4.1%~9.3%(n=6)。市场中的11种铝塑制品均被检测出EAD,其中5种被检测出OAD。对比分析了7个EAD或OAD的检测方法与该方法的差异,指出该方法检出限低、操作简便,可为铝塑复合膜中的EAD和OAD的定性和定量检测提供参考依据。

关键词 液相色谱-三重四极杆串联质谱;铝塑复合膜;芥酸酰胺;油酸酰胺;含量测定

通过铝塑复合手段可提高包装材料的阻隔性,因此铝塑复合膜常用于货架期较长或对气体敏感性较高的食品包装[1-3]。由于静电作用造成的吸附以及层与层之间过大的内摩擦,塑料薄膜在生产和使用过程中存在开口性差等问题,而爽滑剂的加入可以减少该现象的发生[4]。芥酸酰胺(erucamide, EAD)和油酸酰胺(oleamide, OAD)是最常用的2种爽滑剂,一般复配使用[5]。EAD和OAD与聚烯烃熔体相容性良好,且冷却后会从聚烯烃薄膜内部迁移至膜的表面,并在薄膜表面形成一层膜以降低薄膜间的摩擦系数,提高薄膜的爽滑性[6-8]

爽滑剂在产品中的添加量一般为高分子材料质量分数的0.08%~0.4%[9]。目前爽滑剂尚未进行完善的毒理学评估,但现有的研究表明爽滑剂存在一定毒性。其中EAD能够使小鼠行动变缓,认知能力下降。此外,EAD水解生成的芥酸容易引起皮肤损伤[10-12];而OAD与人体的各项生理活动及代谢过程密切相关,属于内源性并具有生物活性的一类物质[13]。食品接触材料中的OAD可迁移至食品,再通过膳食进入人体[14],而通过外源途径进入人体的OAD有可能对人体的各项生理过程和代谢产生干扰[15]

目前,针对EAD和OAD的检测方法主要包括气相色谱法[16-18]、气相色谱-质谱法[11,19-20]、高效液相色谱法[21-22]、液相色谱-质谱法[15,23]等。如朱丽娴等[24]利用HPLC检测经二甲苯溶解聚乙烯提取的EAD;LYU等[11]采用气相色谱-质谱法检测聚乙烯包装材料中EAD和OAD,但这些方法存在检出限高和检测时间长等不足。本文在前人的研究基础上,在检测条件和样品前处理上进一步优化,以液相色谱串联质谱法测定铝塑复合膜中EAD和OAD的含量,该方法快速高效、操作简单,为铝塑复合膜中EAD和OAD的检测提供参考依据。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

食品级均聚聚丙烯母粒(型号:PPH-T03;熔点156 ℃),中国石油化工股份公司茂名分公司;市场销售的11种铝塑复合和镀铝复合食品包装膜或包装袋,由广州海关技术中心国家食品接触材料检测重点实验室提供。

芥酸酰胺标准品(纯度98%),北京百灵威科技有限公司;油酸酰胺标准品(纯度99%),美国Sigma公司;芥酸酰胺(纯度85%,用于制备阳性铝塑复合膜)、油酸酰胺(纯度70%,用于制备阳性铝塑复合膜),上海麦克林生化科技有限公司。

甲醇(色谱级)、乙醇(色谱级)、二氯甲烷(色谱级)、正己烷(色谱级),美国Fisher chemical公司;丙酮(分析纯),广东广试试剂科技有限公司;环己烷(分析纯),二甲苯(分析纯),天津科密欧化学试剂有限公司。

1.2 仪器与设备

液相色谱-三重四极杆串联质谱仪(Agilent 1200-6460),美国Agilent公司;电热鼓风干燥箱(GZX-9240MBE),上海博迅实业有限公司医疗设备厂;样品自动浓缩工作站(Turbo VAPII),美国Caliper公司;EL104电子分析天平(0~120 g,精度0.000 1 g),梅特勒-托利多仪器(上海)有限公司;超声波清洗器(SK250LH),上海科导超声仪器有限公司; 超纯水器(EPED-10TS),南京易普达科技发展有限公司;恒温加热器(COD),青岛路博伟业环保科技有限公司;水浴锅(HH-S4型),国立试验设备研究所(常州市);型双螺杆挤出造粒机(MEDU-22/40),广州市普同实验分析仪器有限公司;小型流延机(JYL-30),佛山市金中河机械有限公司;涂布机(K202),英国RK公司;马弗炉(LT 40/11),德国纳博热工业炉有限公司。

1.3 阳性铝塑复合膜的制备

考虑到市场上样品中目标物较难同时检出,因此制备阳性膜以便实验的开展。分别称取EAD和OAD 1.0 g(精确到0.000 1 g),与食品级PPH母粒998.0 g混合均匀后[25],倒入造粒机重复造粒3次[26],造粒时模头温度为170 ℃,料筒1~9区温度分别为160、160、160、165、165、165、170、170和165 ℃,得到含EAD和OAD/PPH复合母粒。造粒完成后将复合母粒用小型流延膜实验机进行流延成膜,流延机1~3区的温度为180、185、190 ℃,合流区和模具区均是190 ℃,流延得到EAD和OAD /PPH复合膜。不添加2种化合物的空白PPH膜按照同样的方法和条件制备。制成的薄膜厚度为(0.043±0.004) mm,密度为(0.956±0.057) g/cm3

阳性铝塑复合膜由EAD和OAD/PPH复合膜与铝箔利用胶黏剂复合而得,其制备方法如下:首先利用涂布机将胶黏剂均匀地涂在铝箔层上,再利用一定的压力将薄膜与铝层复合,在复合的过程中将气泡挤出,随后放置在45 ℃的恒温箱中干燥36 h,挥发掉溶剂,使其充分交联。

1.4 试验方法

1.4.1 色谱与质谱条件

1.4.1.1 液相色谱条件

色谱柱InfinityLab Poroshell 120EC-C8(100 mm×3.0 mm,2.7 μm,美国Agilent公司);流速0.3 mL/min;流动相用甲醇等梯度洗脱;柱温30 ℃;进样量2 μL;进样时间,4 min。

1.4.1.2 质谱条件

离子源:电喷雾离子源(electron spray ionization, ESI);扫描方式:正离子模式;检测方式:多反应监测 (multiple reaction monitoring, MRM);毛细管电压4 000 V;干燥气流速6 L/min;干燥气温度300 ℃;雾化器压力45 psi;鞘气温度380 ℃;鞘气流速11 L/min;其他主要质谱条件见表1。

表1 EAD和OAD的质谱参数
Table 1 Mass spectrometric parameters of EAD and OAD

化合物母离子(m/z)子离子(m/z)驻留时间/ms碎裂电压/V碰撞能量/eVEAD338.397.1 57.2*1201201351351520OAD282.383.1 69.2*1201201351351515

注:*为定量离子

1.4.2 样品处理

为了避免实验工具带来的EAD和OAD污染,实验过程避免使用塑料滴管、针式过滤器和注射器等塑料制品。实验过程中所使用玻璃器皿(量器除外),洗净后,置于马弗炉400 ℃下烧制1 h,冷却至室温备用。

称取0.1 g(精确到0.000 1 g,约0.2 cm×0.2 cm)阳性铝塑复合膜置于具塞玻璃试管中,加入10 mL乙醇室温(30 ℃)下超声提取1 h,重复提取2次,合并混匀,静置后定容至25 mL,再用移液管取出5 mL提取液转移至玻璃离心管,进行高速离心,离心时间为5 min,离心机转速为6 000 r/min,待离心净化后用玻璃滴管取上清液至进样小瓶,上机分析。

1.4.3 标准曲线及检出限

准确称取EAD和OAD 0.010 0 g,用乙醇配制和稀释成100 mg/L的标准储备液,保藏于4 ℃的冰箱中,经过稀释后配制成0.10、0.50、1.00、1.50、2.00、2.50和3.00 mg/L的一系列标准工作液。

1.4.4 回收率及精确度

为了验证EAD和OAD提取方法的准确性,选取空白铝塑复合膜进行加标回收实验,低、中、高3个加标水平分别为0.5、1.5、2.5 mg/L,每组实验6个平行样,并做样品空白。按照1.3.2对样品进行处理和上机分析,计算其回收率和精密度。

1.4.5 EAD和OAD含量的计算

EAD和OAD含量计算如公式(1)所示:

(1)

式中:X为样品中EAD和OAD的含量, mg/kg;ρ为标准曲线定量的样品EAD和OAD质量浓度, mg/L;ρ0为标准曲线定量的空白样品EAD和OAD质量浓度, mg/L;V为定容体积, mL;m为样品质量,g。

1.4.6 数据统计与图像处理方法

Agilent LC-MS/MS Mass hunter工作站进行数据分析,用Office软件Excel和Origin 9.0对数据结果进行统计分析并作图,Minitab 17 对结果进行显著性分析(P<0.05)。

2 结果与分析

2.1 质谱条件优化

EAD和OAD的分子中含有氨基,易结合H+,所以采用ESI正离子模式进行检测。首先在未接入色谱柱下,优化质谱参数,即以0.1 mL/min的流速注入1 mg/L的EAD和OAD混合标准溶液,在ESI正离子扫描模式下,进行一级质谱扫描确定母离子;随后,进行二级质谱扫描,确定子离子;最后,在MRM模式下对碎裂电压、碰撞能量等参数进行优化,最终获得如表1所示的质谱条件。

2.2 色谱条件的优化

2.2.1 流动相的选择

实验分别比较了甲醇、乙腈、0.1%甲酸甲醇、0.1%甲酸乙腈、甲醇-0.1%甲酸水(体积比为90∶10)、乙腈-0.1%甲酸水(体积比为90∶10)作为流动相时色谱对EAD和OAD的分离效果及灵敏度的影响。结果表明,水相的加入对物质分离存在负面影响,且灵敏度相对较低;甲醇作为流动相时其灵敏度高于乙腈作为流动相时的灵敏度,且噪声较低。一般在正离子模式下,加入甲酸可使目标物预形成[M+H]+,有助于促进质子离子化,从而提高响应灵敏度[27],但使用0.1%甲酸甲醇作为流动相时,目标物的峰型和响应值与甲醇作为流动相时相比无明显变化,因此本实验选择纯甲醇作为流动相。

2.2.2 色谱柱的选择

色谱柱的填料种类和颗粒大小是影响样品组分分离度的主要因素。为获得更高的分离度和灵敏度,本实验选取柱效较高,分离度较好的3种色谱柱进行尝试,A柱:Poroshell 120EC-C8(100 mm×3.0 mm, 2.7 μm);B柱:Poroshell 120EC-C18(150 mm×3.0 mm, 2.7 μm);C柱:ZORBAX SB-C18(150 mm×4.6 mm, 5 μm)。结果表明,EAD和OAD在A柱上形成的色谱峰最佳,具有良好的分离度和响应度。故最终选择Poroshell 120EC-C8色谱柱,其混标总离子流图见图1。

图1 EAD和OAD混标的总离子流图(1 mg/L)
Fig.1 Total ion chromatograms of EAD and OAD (1 mg/L)

2.3 样品前处理方法优化

目前对塑料薄膜的前处理方法有超声提取法、回流萃取法和溶解法,本实验比较了文献和标准中对EAD或OAD的不同前处理方法[11, 22, 24, 28-29],以选择较优的前处理方法实现物质的快速灵敏检测。

超声提取法可加快样品中目标物向溶剂中的溶出,从而实现提取效率的提高。超声提取法依照1.4.2的步骤进行超声提取实验[11]

溶解法通过溶剂将试样溶解制成溶液,进而使目标物与原试样分离。由于复合包装材料中的PPH(熔点156 ℃)和铝箔层(熔点660 ℃)熔点较高,采用二甲苯等有机溶剂加热溶解提取目标物很难进行。称取样品0.1 g(精确到0.000 1 g,约0.2 cm×0.2 cm)于平底烧瓶中,加入25 mL二甲苯,在电热板上加热[24],随后将其定容至25 mL,取1 mL上清液氮吹干,再用1 mL乙醇复溶、振荡、离心、上机分析。

回流萃取法通过萃取装置进行回流萃取,进而分离出目标物。称取样品0.1 g(精确到0.000 1 g,约0.2 cm×0.2 cm)于平底烧瓶中,加入搅拌子和25 mL二氯甲烷/环己烷混合试剂(体积比75∶25),用回流萃取装置搅拌回流90 min。完成回流萃取后将平底烧瓶连带冷凝管从加热板移开,待溶液冷却至室温后容至25 mL,取1 mL上清液氮吹干,再用1 mL乙醇复溶、振荡、离心、上机分析[22]

如图2所示,超声提取法对铝塑膜中的EAD和OAD提取能力最好(P<0.05)。通常认为将薄膜溶解可以促进目标物的溶出,但复合膜的熔点较高不易溶解,且目标物难溶于二甲苯,因此溶解法在此较难进行。故本实验选用超声提取法。

图2 前处理方法对复合膜中EAD和OAD
提取能力的影响
Fig.2 Effects of pretreatment methods on extraction
capability of EAD and OAD from composite film

2.4 提取溶剂的优化

基于上述实验结果,选用超声提取法作为前处理方法,比较了甲醇、乙醇、丙酮、二氯甲烷、正己烷对阳性铝塑复合膜中EAD和OAD的提取效果,目的在于选取一种对阳性铝塑复合膜中的EAD和OAD均具有良好提取效果的溶剂。依照1.4.2的步骤选择不同溶剂进行超声提取实验,结果如图3所示,乙醇对样品中OAD的提取效果同其他4种溶剂存在显著性差异(P<0.05),故选择乙醇作为提取溶剂。

图3 提取溶剂对复合膜中EAD和OAD提取能力的影响
Fig.3 Effects of extraction solvent on extraction
capability of EAD and OAD from composite film

2.5 提取时间的优化

选取乙醇为提取溶剂,对超声时间进行优化。称取0.1 g(精确到0.000 1 g,约0.2 cm×0.2 cm)于试管,加入10 mL乙醇,分别超声提取20、30、40、50、60、70、80 min,将提取液定容至10 mL,离心后上机分析。如图4所示,在超声时间为20~60 min时,乙醇对样品中EAD和OAD的提取效果随时间的延长而增加;超声时间为60 min时,EAD的提取效果达到最大值存在显著性差异(P<0.05);超声时间超过60 min后,超声时间对目标物的提取能力无显著增加。故选择60 min作为最优提取时间。随着超声时间的延长,OAD的提取效果较EAD的变化缓慢,这可能是因为OAD分子质量较小且分子链较短,大部分OAD在薄膜制备过程中已经迁移到薄膜表面[5-7, 9],因此薄膜表面的OAD可在短时间内被超声提取出来,而EAD则需要更长的提取时间。

图4 超声时间对复合膜中EAD和OAD提取能力的影响
Fig.4 Effects of ultrasonic time on extraction capability of EAD and
OAD from composite film

2.6 提取次数的优化

以乙醇为提取溶剂,提取时间60 min为条件,对超声提取次数进行优化,分别重复提取1、2、3和4次,合并后定容至40 mL,离心后上机分析。由图5可知,2次重复提取效果比1次提取效果好,但继续增加提取次数时,乙醇对EAD和OAD的提取效果无显著性差异(P >0.05),因此本文选择重复提取2次为最优提取次数。

图5 超声提取次数对复合膜中EAD和OAD提取
效果的影响
Fig.5 Effects of ultrasonic extraction times on extraction
capability of EAD and OAD from composite film

2.7 方法验证

以EAD和OAD的质量浓度为横坐标,定量离子峰面积为纵坐标,建立工作曲线,结果表明,在0.1~3.0 mg/L的线性范围内两者的质量浓度与峰面积线性关系良好,相关系数均大于0.995。以信噪比S/N≥3为检出限(limit of detection,LOD),以S/N≥10为定量限(limit of quantitation,LOQ),具体数值如表2所示。

表2 EAD和OAD的线性方程、相关系数、线性范围、方法检出限和方法定量限
Table 2 Linear equations, correlation coefficients, linearity range, LOD and LOQ of EAD and OAD

化合物线性方程线性范围/(mg·L-1)相关系数R2检出限/(mg·L-1)定量限/(mg·L-1)芥酸酰胺y=368 571.258 898x+46 872.597 5100.1~3.00.9950.010.03油酸酰胺y=332 150.181 256x+52 305.231 5200.1~3.00.9960.020.05

在加标回收试验中,EAD和OAD的平均回收率为82%~116%,相对标准偏差(RSD)为4.1%~9.3%。结果表明该方法具有良好的准确度和精密度,符合分析要求。

2.8 文献中检测方法比较

由表3列出的检测方法与本文方法比较可知,这些检测方法存在检出限高、上机检测时间长和分离效果不佳等不足。因而本文在前人的研究基础上,进一步优化检测方法,通过液相色谱-质谱法建立了铝塑复合膜中EAD和OAD含量的检测方法,上机检测时间为4 min,并且检出限均≤0.02 mg/L。

表3 EAD和OAD的检测方法
Table 3 Detection methods of EAD and OAD

化合物 前处理方法检测仪器线性范围相关系数R2检出限平均回收率/%相对标准偏差/%保留时间/min色谱图芥酸酰胺[24]二甲苯溶解提取高效液相色谱2~100 mg/L0.9990.6 mg/L98.6~112.35.6~8.65.70/芥酸酰胺[28]回流萃取高效液相色谱25~250 mg/L0.9990.2 mg/L98.6~103.20.4~1.49.21芥酸酰胺[29]二甲苯溶解提取气相色谱-质谱联用0.1~5 mg/L0.9930.03 mg/L78.3~114.12.9~9.79.50/油酸酰胺/芥酸酰胺[11]加压溶剂提取气相色谱-质谱联用0.4~100.0/0.4~100.0 mg/kg0.999/0.9980.103/0.105 mg/kg94.0~96.03.08.84/13.68油酸酰胺/芥酸酰胺[18]压力流体萃取气相色谱-火焰离子化检测器12~66/8.5~57 mg/L0.998/0.9983.6/2.5 mg/L1008.0~9.611.10/ 15.20芥酸酰胺[16]回流萃取气相色谱2.5~100 mg/kg0.9990.96 mg/kg96~1051.1~4.711.50芥酸酰胺[22]回流萃取液相色谱//2 mg/kg//7.80油酸酰胺/芥酸酰胺/(本方法)超声提取液相色谱串联质谱0.1~3.0 mg/L0.996/0.9950.02/0.01 mg/L82%~116%4.1%~9.3%2.01/2.30

注:“/”表示文献或标准中未指出

2.9 市场样品的测定

在优化的试验条件下对市场上的11种镀铝复合膜和铝塑复合膜中EAD和OAD的含量进行测定。结果如表4所示,11种样品中均被检测出EAD,5种样品被检测出OAD。80%被检出OAD的样品具有印刷层,因此被检出的OAD可能来自于油墨。

表4 11种样品信息和检测结果(n=3)
Table 4 11 kinds of sample information and test results(n=3)

样品编号样品信息芥酸酰胺含量/(mg·kg-1)RSD/%油酸酰胺含量/(mg·kg-1)RSD/%1铝塑复合黑胡椒酱包装膜145.521.73--2铝塑复合咖啡包装袋119.273.732.750.413镀铝复合鸡精包装袋47.342.5277.043.064铝塑复合茶叶包装袋59.142.082.380.265镀铝复合坚果包装袋102.093.0111.090.626空白铝塑复合膜65.021.73--7空白铝塑复合膜80.535.77--8空白镀铝复合包装膜124.683.24--9空白铝塑复合膜62.121.35--10空白镀铝复合包装膜47.382.52--11空白镀铝复合包装膜71.860.353.330.78

注:“空白”表示未经印刷;“-”表示未检出

3 结论

铝塑复合材料具有良好的阻隔性。由于材料开口的困难,EAD和OAD常作为爽滑剂加入铝塑复合膜中,但其可能向食品迁移。本研究建立了超声提取-液质联用法快速检测铝塑复合膜中EAD和OAD的含量。该方法前处理简单,分离度较好,可在4 min内上机快速检测出EAD和OAD,2种物质的检出限均≤0.02 mg/L,定量限均≤0.05 mg/L,线性范围为0.1~3.0 mg/L,优于现有方法。加标回收实验中,EAD和OAD的平均回收率为82%~116%,相对标准偏差为4.1%~9.3%。并检测了市场销售的11种铝塑复合膜,其中EAD的检出率为100%,OAD的检出率为45.5%。通过比较分析7个检测方法与本文检测方法,本文检测方法检出限更低、上机检测时间短、同时检测EAD和OAD且分离效果好,可对市场中的铝塑复合膜中EAD和OAD进行定量分析。

参考文献

[1] 曾忠斌,于佳佳,陈欣.铝塑与镀铝复合膜包材耐揉搓性研究[J].中国包装, 2013,33(10):56-58.

[2] 徐冰,陈志雄,吴育荣.铝塑复合软包装材料干式复合的工艺控制[J].塑料制造, 2011(6):69-73.

[3] WAKABAYASHI M,KOHNO T,TANA Y,et al.Study on the bleeding mechanism of slip agents in a polypropylene film using molecular dynamics[J].International Polymer Processing,2009,24(2):133-139.

[4] 郭锐,王群涛,王日辉,等.开口剂对LLDPE薄膜性能的影响[J].合成树脂及塑料,2013,30(6):56-58.

[5] 张娟,赵允,钟锦标,等.爽滑剂在塑料螺纹盖中的应用现状[J].塑料制造,2016(5):64-67.

[6] SHI Ting,DING Wei,KESSLER D W,et al.Investigation of air-liquid interface rings in buffer preparation vessels: The role of slip agents[J].PDA Journal of Pharmaceutical Science and Technology,2016,70(3):272-281.

[7] FARAJZADEH M A,EBRAHIMI M, RANJI A,et al.HPLC and GC methods for determination of lubricants and their evaluation in analysis of real samples of polyethylene[J].Microchimica Acta,2006,153(1-2):73-78.

[8] DULAL N,SHANKS R,CHALMERS D,et al.Migration and performance of erucamide slip additive in high-density polyethylene bottle caps[J].Journal of Applied Polymer Science,2018,135(43):46 822.

[9] 任晓兵.开口爽滑剂在低密度聚乙烯薄膜中的应用[J].当代化工,2017,46(1):173-176.

[10] 何金凤,吕新广,林勤保,等.聚乳酸发泡餐盒中两种爽滑剂向食品模拟物的迁移[J].食品与发酵工业,2019,45(7):123-129.

[11] LYU G,WANG L,LIU J,et al.Method for determination of fatty acid amides in polyethylene packaging materials-gas chromatography/mass spectrometry[J].Journal of Chromatography A,2009,1 216(48):8 545-8 548.

[12] FEKETE Z,ROFUSZ T,ANGYAL V,et al.Gas chromatographic-mass spectrometric analysis and subsequent quality improvement of plastic infusion packaging materials[J].J Pharm Biomed Anal,2014,97:111-115.

[13] 郭长彬,宋宏锐.内源性睡眠诱导物质油酰胺的研究进展[J].中国药物化学杂志,2000(4):68-72.

[14] HILEY C R,HOI P M.Oleamide:A fatty acid amide signaling molecule in the cardiovascular system?[J].Cardiovascular Drug Reviews, 2007,25(1):46-60.

[15] 晏嫣,张阳,姜德玮,等.超高效液相色谱-串联质谱法测定食品接触材料中油酸酰胺的迁移量[J].食品安全质量检测学报, 2019,10(6):1 710-1 714.

[16] 郝萍,王海,韩晓昱,等.用气相色谱法测定高密度聚乙烯中爽滑剂芥酸酰胺的含量[J].石化技术与应用,2013,31(1):71-73.

[17] GARRIDO-LOPEZ A,ESQUIU V,TENA M T.Comparison of three gas chromatography methods for the determination of slip agents in polyethylene films[J].Journal of Chromatography A,2007,1 150(1-2):178-182.

[18] GARRIDO-LOPEZ A,ESQUIU V,TENA M T.Determination of oleamide and erucamide in polyethylene films by pres-surised fluid extraction and gas chromatography[J].Journal of Chromatography A,2006,1 124(1-2):51-56.

[19] 于文涛,金明杰,李艳,等.GC-MS直接测定芥酸酰胺[J].分析试验室,2009,28(2):120-122.

[20] 房宁,王子剑,赵劲松,等.气相色谱-质谱法测定食品接触材料润滑剂在脂类食品模拟物中迁移量[J].中国食品卫生杂志, 2016,28(3):319-322.

[21] SN/T 1504.2—2017 食品容器、包装用塑料原料 第2部分:聚乙烯中抗氧化剂和芥酸酰胺爽滑剂的测定 液相色谱法[S].天津:国家质量监督检验检疫局总局,2018.

[22] GB/T 25277—2010塑料 均聚聚丙烯(PP-H)中酚类抗氧剂和芥酸酰胺爽滑剂的测定 液相色谱法[S].北京:国家质量监督检验检疫局总局和中国国家标准化管理委员会,2011.

[23] MORETA C,TENA M. Determination of plastic additives in packaging by liquid chromatography coupled to high resolution mass spectrometry[J].Journal of Chromatography A,2015,1 414:77-87.

[24] 朱丽娴,林勤保,钟怀宁,等.聚乙烯薄膜中芥酸酰胺的测定及其稳定性研究[J].包装工程, 2018,39(7):86-90.

[25] 麻玉龙,黄晓枭,王聚恒,等.芥酸酰胺对三元PP薄膜材料性能的影响[J].塑料工业,2018,46(1):91-94.

[26] LI B,WANG Z W,LI Q B,et al.Simultaneous determination of antioxidants and ultraviolet stabilizers in polypropylene food packaging and food simulants by high-performance liquid chromatography[J].Acta Chromatographica,2016,29(2):173-192.

[27] 陈岑,黄柳倩,程巧鸳,等.基于QuEChERS提取的高效液相色谱-串联质谱法同时测定4种不同基质类型化妆品中15种硝基咪唑类禁用药物[J].分析测试学报,2019,38(11):1 285-1 293.

[28] 杨璐,周国桁,焦毅,等.高效液相色谱内标法检测塑料中芥酸酰胺[J].分析仪器,2019(2):66-69.

[29] 王旖旎,林勤保,钟怀宁,等.低密度聚乙烯薄膜中芥酸酰胺的检测及其向食品模拟物的迁移[J].中国塑料, 2018,32(4):118-124.

Determination of erucamide and oleamide in aluminum-plastic compound film by liquid chromatography tandem mass spectrometry

MENG Fangling1,2,HU Changying1,3,LI Zicheng4,WANG Zhiwei1,2*

1(Jinan University, Packaging Engineering Institute, Zhuhai 519070,China)2(Jinan University, College of Packaging Engineering, Zhuhai 519070,China)3(Jinan University, Department of Food Science and Engineering, Guangzhou 510632,China) 4(Guangzhou Customers District Technology Center, Guangzhou 510075,China)

ABSTRACT An analytical method for the determination of erucamide (EAD) and oleamide (OAD) in aluminum-plastic compound film by liquid chromatography-triple quadrupole tandem mass spectrometry was established. Under the optimized spectrometry conditions, chromatographic columns and mobile phases, the positive aluminum-plastic compound film was used to optimize the sample pretreatment method, extraction solvent and extraction time. And 11 types of aluminum-plastic compound film on the market were determined. The results showed that the optimum condition for the detection of EAD and OAD was as follows: Ethanol was used as extraction solvent; ultrasonic was performed for 60 min and the extraction was repeated twice; Poroshell 120EC-C8 (100 mm×3.0 mm, 2.7 μm) was used with pure methanol as mobile phase. There were good linear relationships with their correlation coefficients(R2) all greater than 0.995 for EAD and OAD in the concentration of 0.1-3.0 mg/L. And the detection limits were all less than 0.02 mg/L and quantitative limits were less than or equal to 0.05 mg/L. The average recoveries were 82%-116% with the relative standard deviation (RSD) were 4.1%-9.3% (n=6). EAD could be detected in all 11 samples while OAD only could be detected in 5 samples. So the method developed here is easy to operate with low detective limit, which could provide a reference for the qualitative and quantitative detection of EAD and OAD in aluminum-plastic compound film.

Key words liquid chromatography-triple quadrupole tandem mass spectrometry; aluminum-plastic compound film; erucamide; oleamide; content determination

DOI:10.13995/j.cnki.11-1802/ts.024564

引用格式:蒙芳玲,胡长鹰,黎梓城,等.液相色谱串联质谱法测定铝塑复合膜中芥酸酰胺和油酸酰胺[J].食品与发酵工业,2020,46(20):208-213.MENG Fangling,HU Changying,LI Zicheng, et al. Determination of erucamide and oleamide in aluminum-plastic compound film by liquid chromatography tandem mass spectrometry[J].Food and Fermentation Industries,2020,46(20):208-213.

第一作者:硕士研究生(王志伟教授为通讯作者,E-mail:wangzw@jnu.edu.cn)

基金项目:国家重点研发计划(2018YFC1603205/2018YFC1603200);广东省重点领域研发计划项目(2019B020212002)

收稿日期:2020-05-26,改回日期:2020-06-16