双孢菇贮藏不同时期乙醇处理对其保鲜作用研究

刘锦,李云云,程圣,何欣遥,张敏*

(西南大学 食品科学学院,西南大学食品贮藏与物流研究中心,农业部农产品贮藏保鲜质量安全风险评估实验室(重庆),重庆,400715)

摘 要 在双孢菇贮藏的第0天,第4天,第8天,用浓度400 μL/L的乙醇对其熏蒸处理以研究乙醇不同处理时间对其品质的影响。结果表明,贮藏前期处理组(第4天)虽然在抑制苯丙氨酸解氨酶(phenylalamine ammonia-lyase,PAL)活性和维持硬度方面效果不如入库前处理(第0天)(P<0.05),但在降低呼吸强度方面效果显著,且在相对电导率、总酚含量、菌落总数、多酚氧化酶(polyphenol oxidase,PPO)、过氧化物酶 (peroxidase,POD)活性,维持较高白度值和感官评价等方面则与入库前处理效果相当(P>0.05)。而贮藏后期乙醇处理(第8天)虽能减弱PPO酶活,但是不能有效抑制呼吸强度的加剧,与感官评价有关的白度、硬度,贮藏后期处理组也不能有效维持。因此,如果双孢菇无法进行入库前乙醇处理,贮藏前期处理(第4天)是一种有效的补救措施,但是不建议在贮藏后期才进行处理。

关键词 双孢菇;乙醇熏蒸;入库前处理;贮藏前期处理;贮藏后期处理

第一作者:硕士研究生(张敏副教授为通讯作者,E-mail:zmqx123@163.com)

基金项目:重庆市科委社会事业与民生保障科技创新专项(cstc2015shms-ztzx80010)

收稿日期:2019-09-16,改回日期:2019-11-01

DOI:10.13995/j.cnki.11-1802/ts.022279

引用格式:刘锦,李云云,程圣,等.双孢菇贮藏不同时期乙醇处理对其保鲜作用研究[J].食品与发酵工业,2020,46(4):227-233.LIU Jin, LI Yunyun, CHENG Sheng, et al. Effect of ethanol treatment on the preservation of Agaricus bisporus storage in different periods[J].Food and Fermentation Industries,2020,46(4):227-233.

Effect of ethanol treatment on the preservation of Agaricus bisporusstorage in different periods

LIU Jin, LI Yunyun, CHENG Sheng, HE Xinyao, ZHANG Min*

(College of Food Science, Food Storage and Logistics Research Center, Southwest University,Laboratory of Quality & SafetyRisk Assessment for Argo-products on Storage and Preservation(Chongqing),Mimnistry of Agriculture, Chongqing 400715, China)

ABSTRACT The effect of ethanol fumigation treatment on the quality of Agaricus bisporus after harvest was studied by fumigation treatment on the 0 th, 4 th and 8 th day of the storage with an ethanol concentration of 400 μL/L. The results showed that compared with pre-storage treatment(day 0), Agaricus bisporus which were treated at early stage of storage(day 4) had a significant effect in reducing respiratory intensity while it is slightly less effective in inhibiting phenylalamine ammonia-lyase (PAL) activity and maintaining hardness in the later storage period (P<0.05). As for relative conductivity, total phenolic content, total number of colonies, polyphenol oxidase (PPO) activity, peroxidase (POD) activity, whiteness and sensory evaluation, there was no significant difference between the two groups. The later storage treatment group (day 8) could not effectively inhibit the increase of respiratory intensity even though it could reduce the PPO enzyme activity. In addition, whiteness and hardness, which connected with sensory evaluation, were not effectively maintained in the later storage treatment group. Therefore, if Agaricus bisporus cannot be used for ethanol fumigation before storage, treatment at an early stage of storage is an effective remedy for preservation, but it is not recommended to treat it at the later stage of storage.

Key words Agaricus bisporus; ethanol fumigation; pre-storage treatment; early storage treatment; later storage treatment

双孢菇因其味道好,营养高,已成为世界上最广泛栽培及食用的菌种[1]。但双孢菇呼吸作用强,菌体易腐败[2]。根据市场调研,双孢菇需要在不同地点收集后统一贮藏,由于地点不同,收集时间分散,经销商很有可能不方便对蘑菇进行入库前统一处理,因此探讨收入冷库后再处理的方式对蘑菇品质的影响,寻找替代入库前处理的方法具有现实操作意义。

目前对于双胞菇采后贮藏保鲜措施有气调保鲜[3]、臭氧处理[4]、辐照保鲜[5]、涂膜保鲜[6]以及化学药剂处理[7]等。乙醇作为植物天然代谢物[8],无毒无害,不易残留,应用到果蔬中能够杀灭微生物[9],抑制呼吸作用从而起到保鲜效果[10]。同时乙醇便宜易得,熏蒸操作简单,挥发后无残留,更安全、更容易为消费者接受。HAN等[11]用浓度为6 mL/kg乙醇处理西兰花,结果显示乙醇能有效抑制西兰花贮藏阶段失重率;WANG等[12]以乙醇蒸气熏蒸枇杷,发现乙醇能有效抑制真菌引起的炭疽病;刘洪丽[13]的研究证明乙醇能有效减弱鲜切荸荠呼吸强度;WANG等[14]以浓度为150~750 μL/L乙醇熏蒸鲜切菊芋,发现菊芋的呼吸强度、PAL酶活和总酚含量的上升趋势得到显著抑制。有研究表明,入库前乙醇处理菇类能够有效改善其采后品质[15],但目前乙醇处理时间主要集中在入库前,有关乙醇处理时期的研究极为匮乏。所以本文研究乙醇处理的不同时期对双孢菇保鲜品质的影响,在经销商没有时间进行入库前处理的情况下,寻找一种补救措施以延长双孢菇的保鲜期。

1 材料与方法

1.1 材料

从北碚种植户得到无病虫害和机械损伤的双孢蘑菇,要求种植户采后8 h内运送至实验室。

1.2 仪器与设备

Headspace analyzer,Pac Check® Model 650EC,US MOCON);色差仪,UltraScan® PRO,HunterLab,USA;UV 分光光度计 (UV-2450PC),岛津制作所。

1.3 样品处理

挑选尺寸接近,无病害,无机械损伤,处于闭伞阶段的双孢菇进行处理,试验共有4组,每组3个平行。

A组:入库前对A组进行乙醇熏蒸处理(乙醇浓度400 μL/L,时间3 h),熏蒸温度保持25 ℃。熏蒸完毕,通风半小时后保持温度在2~4 ℃预冷0.5 h,最后分装到统一体积PE袋(每袋100 g),共21袋放入冷库(温度2~4 ℃,湿度95%)贮藏12 d,每隔1 d随机取3袋检测指标。

B组:入库后即分装至PE袋(每袋100 g)贮藏12 d,冷库温度2~4 ℃,湿度95%。贮藏第4天重复A组熏蒸处理,从入库开始每隔1 d随机取3袋检测指标。

C组:入库后即分装至PE袋(每袋100 g)贮藏12 d,冷库温度2~4 ℃,湿度95%。贮藏第8天重复A组熏蒸处理,从入库开始每隔1 d随机取3袋检测指标。

CK组:入库后即分装至PE袋(每袋100 g)贮藏12 d,冷库温度2~4 ℃,湿度95%。从入库开始每隔1 d随机取3袋检测指标。

1.4 测定指标

1.4.1 呼吸强度

通过顶空分析仪静置法[16]测定。呼吸强度以每小时每千克双孢蘑菇在呼吸代谢过程中释放的CO2的质量表示。

1.4.2 PAL(phenylalamine ammonialyase)活性

参考曹健康等[17]方法。以每小时每克(鲜重)菇肉组织酶促反应体系吸光度值增加0.01为1个PAL活性单位(U)。

1.4.3 总酚含量

参照ZHOU等[18]方法。以每克(鲜重)菇肉组织在波长280 nm处吸光度值表示总酚含量(U)。

1.4.4 PPO(polyphenol oxidase)活性

参考OMS-OLIU等[19]方法并略做修改。以每克果蔬样品每分钟吸光度变化值增加0.01为一个活性单位。

1.4.5 POD(perxidase)活性

参考MOERSCHBACHER等[20]方法并稍作修改。在470 nm处测吸光度值,以每克果蔬样品每分钟吸光度变化值增加0.01为1个过氧化物酶活性单位(U),计算POD活性。

1.4.6 相对电导率

参考蒋冬花等[21]方法。以蘑菇的相对电导率值来表示其相对电导率。

1.4.7 菌落总数

参照GB/T 4789.2—2016[22] 测定菌落总数,结果以lgCFU/g表示。

1.4.8 硬度

参考JIANG等[23]方法。硬度用美国CT-3型质构仪测定,探头直径为5 mm,将双孢蘑菇去柄,菌盖上切掉2 mm厚的表皮,将切好的双孢蘑菇固定在操作台上,保持双孢蘑菇切面与探头接触面平行,探头以2 mm/s的穿刺速率进行下压,下压深度为6 mm,通过力与时间的作用曲线,以最大峰值(Nmax)为硬度指标。

1.4.9 白度

参考JAWORSKA等[24]方法,略有改动,L*值越大表示白度越大。

1.4.10 感官评价

由经过培训的6人对双孢蘑菇的色泽、质地、异味等感官指标进行评定。感官指标评定标准如表1所示。

表1 双孢蘑菇感官指标评价标准
Table 1 Standard of sensory properties

评分/分开伞色泽异味是否发黏质地8~10无色泽洁白无无有弹性6~8轻度开伞色泽洁白稍异味稍发黏稍软4~6明显开伞稍褐变明显异味明显发黏明显软烂<4开伞严重严重褐变异味严重严重发黏严重软烂

1.5 数据分析

采用Microsoft Excel 2010 进行数据整理,用SPSS 13.0、LSD法对各项指标进行显著性分析,显著性水平为0.05。Origin 2016对数据进行图像处理。

2 结果与分析

2.1 不同时期乙醇处理对双孢菇呼吸强度的影响

双孢菇作为呼吸跃变型园艺产品,采摘后得不到能量补充,只能通过呼吸作用消耗自身有机物以获得能量。呼吸作用产生大量水汽和呼吸热滋生细菌,影响双孢蘑菇商品性和耐贮性。根据图1,处理组和对照组双孢菇呼吸强度均上升到第2天后下降。A组双孢菇的呼吸峰值显著低于CK组(P<0.05)。B组在第4天处理后呼吸强度短暂上升至第6天,这可能是B组熏蒸处理时从冷柜中转移出来,温度上升,也可能是重新包装后新包装内高氧气促进了双孢菇的呼吸强度。

B组呼吸强度从第6天开始迅速减少,并在第10天与CK组有极明显差异(P<0.05),呼吸强度明显低于A组(P<0.05),这可能是由于乙醇对部分细菌有即时杀灭作用,从而抑制菇上微生物呼吸作用,也可能是因为乙醇使呼吸作用酶失活[25]。同时有研究表明,乙醇能降低乙烯合成相关酶活性以减弱双胞菇呼吸作用[26]。B组处理时间居中,乙醇在贮藏末期残留较A组多,故而维持呼吸作用酶较低活性的效果优于A组。C组与CK组在整个贮藏过程中没有差异,或许是因为后期乙醇熏蒸对双孢菇作用不大。综上,A、B组处理后均能有效减弱呼吸作用,C组则作用不大。

图1 不同时期乙醇处理对双孢菇呼吸强度的影响
Fig.1 Effect of ethanol treatment used at different times
during storage on respiration rate of Agaricus bisporus

2.2 不同时期乙醇处理对双孢菇PAL活性的影响

PAL酶催化L-苯丙氨酸并同时生成酚类物质从而导致双孢菇褐变[27],失去商品价值。根据图2,各组PAL活性贮藏前2天持续增强,也许是样品去根导致了逆境胁迫[28]。从第4天开始,A组PAL酶活明显降低、并与CK组之间存在极显著差异(P<0.01)直到贮藏结束,这可能是由于乙醇能够迅速抑制PAL的mRNA合成,从而降低其活性。乙醇处理莴苣[29]也得出相似结论。

与CK组相比,B组从第8天开始,C组从第12天开始能极显著抑制PAL的活性(P<0.01),但二者效果不如A组(P<0.05)。C组从第10天开始与B组没有显著差异(P>0.05)。总之,A组能很好的抑制PAL活性(P<0.01),B组、C组也能很好的抑制后期PAL活性,但不能达到A组的效果。

图2 不同时期乙醇处理对双孢菇PAL活性的影响
Fig.2 Effect of ethanol treatment used at different times
during storage on PAL activity of Agaricus bisporus

2.3 不同时期乙醇处理对双孢菇总酚含量的影响

酚类物质是酶促褐变的底物之一[30],过高的总酚含量会使双孢菇易褐变。如图3所示,处理组和对照组总酚含量均先增加后降低,也许是外源乙醇减弱PAL酶活,即减少酚类产生。这与王慧倩等对鲜切西兰花进行乙醇熏蒸处理得到的趋势类似[31]。各组前2 d酚类含量的上升可能是因为去根胁迫诱导了PAL活性提高[32]。第2天以后,各组总酚含量持续下降,可能是由于PPO活性一直存在导致总酚不断消耗,也可能是因为是总酚作为氢供体参与了自由基清除[33]。在整个贮藏期间A组能够显著降低总酚含量(P<0.01)。B组总酚从第4天开始迅速降低,第6天开始与CK组存在显著差异(P<0.05),这时B组PPO、POD活性并未上升,总酚含量迅速下降的原因可能是本实验中PAL活性的下降。B组第10天、C组第12天开始与CK组存在极显著差异(P<0.01),但与A组差异不大(P>0.05)。总之,A、B、C组都能降低总酚含量,但3个处理组之间没有显著差异。

图3 不同时期乙醇处理对双孢菇总酚含量的影响
Fig.3 Effect of ethanol treatment used at different
times during storage on total polyphenols content of
Agaricus bisporus

2.4 不同时期乙醇处理对双孢菇PPO的影响

PPO是一种导致蘑菇采后褐变的重要蛋白酶[34]。PPO酶能催化酚类形成醌类[35],从而使得双孢菇产生褐变降低商品价值。根据图4,各组PPO活性在贮藏前2 d上升很快,可能是因为去根处理导致膜结构遭到破坏,PPO活性增强以催化木质素及其他酚类物质氧化产物的生成,对伤口形成屏障[36]。A组第6天,B组第8天,C组第10天开始与CK组有明显区别(P<0.05),这可能是因为乙醇熏蒸处理抑制了PAL酶活,也就抑制了酚类物质的合成,减少了PPO作用底物故而抑制其活性,也有可能是因为乙醇分子和PPO作用底物有类似化学解离特性的羟基,通过与底物共同争夺酶活性中心基团以降低PPO活性[37],但是A、B组之间一直并不存在显著性差异(P>0.05),可能是因为贮藏前4 d 各组PPO活性均上升,掩盖了部分乙醇熏蒸的效果。贮藏结束时,所有处理组与对照组都存在极显著差异(P<0.01),B组抑制PPO效果较A组稍差但差异不大,C组效果最差(P<0.05)。总之,3个处理组均可减弱PPO活性并且A,B组效果相当。

图4 不同时期乙醇处理对双孢菇PPO活性的影响
Fig.4 Effect of ethanol treatment used at different
times during storage on PPO activity of Agaricus bisporus

2.5 不同时期乙醇处理对双孢菇POD的影响

POD酶在有过氧化氢存在时可以氧化酚类成醌类,导致双孢菇褐变[38]。各组POD活性总体呈上升趋势,但存在波动。A组在贮藏前4 d未能显著抑制抑制双孢菇POD酶活性(P>0.05),可能是因为处理时操作破坏了细胞组织膜结构,细胞中游离态POD增加。与CK相比,A组第6天开始能显著抑制POD活性(P<0.05),第8天开始A组达到了极显著水平(P<0.01)。

和CK相比,B组从第8天开始能显著抑制POD活性(P<0.05),在整个贮藏期间效果与A组相当。C组第8天后POD活性急速减弱。贮藏结束,C组POD活性明显低于CK组(P<0.05),但仍高于A组和B组,3个处理组都能抑制双孢菇POD的活性,可能是因为乙醇熏蒸抑制形成速度[39],减少了样品中过氧化氢占比,也有可能是乙醇熏蒸减弱了PAL酶活使POD反应底物总酚含量降低,从而抑制其活性。B组效果最佳,可能是因为B组乙醇处理时间居中,因此在贮藏结束时较之A组有更多的乙醇残留,较之C组则更早地对PAL酶活以及过氧化氢含量起到控制作用。

图5 不同时期乙醇处理对双孢菇POD活性的影响
Fig.5 Effect of ethanol treatment used at different
times during storage on POD activity of Agaricus bisporus

2.6 不同时期乙醇处理对双孢菇相对电导率的影响

相对电导率可以表征细胞膜完整度,相对电导率越大,细胞完整度越低[40]。根据图6,各组相对电导率随时间总体上升,这可能是因为双胞菇贮藏期间组成细胞壁的果胶大量降解,导致细胞结构被破坏。A组从第6天开始显著抑制了双孢菇的相对电导率(P<0.05)到贮藏结束,而B组需要从第8天开始才能显著抑制相对电导率(P<0.05),但与A组差异不大(P>0.05)。第12天,A、B组均可以极显著减弱相对电导率上升趋势(P<0.01),A、B组之间无明显区别,也许是因为活性氧的产生受到了抑制,保护了细胞。C组也能显著抑制双孢菇相对电导率的上升(P>0.05),但由于乙醇在第8天才处理,活性氧已经在相当长的时间内对细胞造成了伤害,故而效果不如A、B组。由此可见,A、B、C组都能很好地抑制双孢菇相对电导率的上升,并且B组和A组效果相当。

图6 不同时期乙醇处理对双孢菇相对电导率的影响
Fig.6 Effect of ethanol treatment used at different times
during storage on relative conductivity of Agaricus bisporus

2.7 不同时期乙醇处理对双孢菇菌落总数的影响

双孢菇作为食用菌,其子实体营养丰富且无角质层,易滋生细菌。乙醇对微生物有致死作用,这是因为乙醇可以破坏菌体蛋白的肽键,使其变性,同时乙醇还具有溶菌作用[41-43]。根据图7,各组菌落总数在贮藏期间呈增加趋势。与CK组相比,A组第0 d菌落总数下降了1.19 lg CFU/g,并且在贮藏期间二者差异极显著(P<0.01),这可能是因为乙醇熏蒸对双孢菇有直接的杀菌作用。B组经乙醇熏蒸处理后菌落总数立刻下降了1 lg CFU/g,从第4天开始到第12天与CK组存在非常明显差别(P<0.01),但与A组差异不大。C组第8天的菌落总数下降了1.14 lg CFU/g,与CK组存在极显著差异(P<0.01)直到贮藏结束。贮藏结束时,A组、B组、C组分别达到7.11、7.29、7.26 lg CFU/g,3个处理组之间没有显著差异(P>0.05)。由此可见,乙醇不同处理时间均可以有效抑制菌落生长(P<0.01),且3个处理组之间差异不大(P>0.05)。

图7 不同时期乙醇处理对双孢菇菌落总数的影响
Fig.7 Effect of ethanol treatment used at different
times during storage on total bacterial counts of
Agaricus bisporus

2.8 不同时期乙醇处理对双孢菇硬度的影响

硬度是果蔬贮藏质量的标志,对消费者购买欲有重要影响,乙醇通过抑制双孢菇的呼吸强度能够保持较好的硬度。根据图8可知,双孢菇硬度值随着时间延长不断下降,这可能是因为双孢菇呼吸消耗大量有机物。与CK组相比,A组从第2天开始显著抑制双孢菇硬度下降直到贮藏结束(P<0.05),也许是因为A组从第2天开始呼吸作用受到抑制。B、C组经乙醇熏蒸后与CK组差异不大(P>0.05)甚至略有下降,可能是因为双孢菇乙醇熏蒸时从4 ℃环境转移到常温,温度上升引起硬度下降,这与郭禹等[39]对马铃薯的研究结果类似,也有可能是因为B组、C组经乙醇熏蒸后呼吸作用略有加剧导致硬度下降。第12天,A组与CK组存在显著差异(P<0.05),但B、C两组与CK组差异不大(P>0.05)。A组能很好地抑制双孢菇硬度值的下降(P<0.05),B组、C组则不能起到明显作用。

图8 不同时期乙醇处理对双孢菇硬度的影响
Fig.8 Effect of ethanol treatment used at different
times during storage on firmness of Agaricus bisporus

2.9 不同时期乙醇处理对双孢菇白度的影响

白度是消费者购买双孢菇时重要的指标,当L*值小于80时,从外观上来说双孢菇丧失了商品价值[40]。根据图9,双孢菇的白度值在贮藏过程中不断下降。与CK组相比,A组从第4天开始显著抑制白度的下降(P<0.05),并从第6天开始达到极显著效果(P<0.01)。B组从第6 d开始显著抑制白度的下降(P<0.05),第10天开始达到极显著效果(P<0.01),且B组与A组第6天后没有显著差异(P>0.05),说明乙醇熏蒸能够即时起到保护双孢菇白度值的作用,也许是因为乙醇熏蒸能明显减弱PPO、POD酶活以及相对电导率、总酚上升速率。C组双孢菇白度值从第10天开始下降,但与CK组相差不大(P>0.05)。第8天乙醇熏蒸对白度作用较小,可能是C组样品呼吸强度已经无明显减弱。由此可见,A组在贮藏期间显著抑制双孢菇白度值的下降(P<0.05),B组在贮藏中后期显著维持了白度值(P<0.05)并且在第12天略高于A组(P>0.05),这与本实验中B组能在贮藏末期更好抑制PPO和POD酶活的结果保持一致。C组能在后期抑制双孢菇白度值的下降,但是与CK组没有显著差异(P>0.05),这可能是因为C组后期未能有效抑制POD酶活以及相对电导率的上升。

图9 不同时期乙醇处理对双孢菇白度的影响
Fig.9 Effect of ethanol treatment used at different
times during storage on whiteness of Agaricus bisporus

2.10 不同时期乙醇处理对双孢菇感官评价的影响

根据图10,在贮藏期间双孢菇的感官评价分值不断下降。与CK组相比,A组从第4天开始显著抑制了感官品质的劣变(P<0.05)并在第6天达到极显著水平(P<0.01)。B组第6天开始显著抑制了感官品质的劣变(P<0.05)直到贮藏结束。第8天开始CK组和C组出现肉眼可见的褐变,气味改变,手感发黏而A、B气味和手感正常,可能是乙醇抑制了A、B组微生物的生长并维持PPO、POD较低活性。第10天,CK组得分仅5.5。C组略高于CK组。第12天,A、B两组得分分别为6.5、6.25分。综上,与CK组相比,A、B两组保持双孢菇感官评价效果较好(P<0.01),且A、B作用相当(P>0.05),而C组与CK组不存在显著性差异(P>0.05)。

图10 不同时期乙醇处理对双孢菇感官评价的影响
Fig.10 Effect of ethanol treatment used at different times
during storage on sensory properties of Agaricus bisporus

3 结论

本研究表明,与入库前乙醇熏蒸处理相比,贮藏前期(第4天)对双孢菇进行乙醇熏蒸处理虽然在抑制PAL活性和维持硬度方面效果略差,但是仍然可以保持其较低的相对电导率、总酚含量和菌落总数,抑制PAL、PPO、POD的活性,维持较高的白度值和感官评价。贮藏前期处理(第4天)抑制双孢菇后期呼吸强度效果最好。而贮藏后期(第8天)处理虽能更好抑制贮藏后期PPO的活性,但在呼吸强度、白度、硬度、感官评价方面效果不好。综上所述,对于双胞菇来说乙醇入库前处理效果最好,贮藏前期处理(第4天)虽无法完全达到入库前处理的效果,但依然能保持很好的商品性。对于商家来说,即使不同采收时间,不同地域送来的双孢菇需要分批进入冷库,在其贮藏第4天才处理,效果依然会不错,但不建议在贮藏后期也就是第8天才进行处理。

参考文献

[1] FOULONGNE-ORIOL M, RODIER A, CAUMONT P, et al. Agaricus bisporus cultivars: Hidden diversity beyond apparent uniformity[C]//Proceedings of the 7th International Conference on Mushroom Biology and Mushroom Products (ICMBMP7). Institut National de la Recherche Agronomique (INRA) France, 2011: 4-7.

[2] 李云云, 魏丹, 张敏. 微孔膜对双孢蘑菇物流升温后保鲜品质的影响[J]. 包装工程, 2016,37(11):52-57.

[3] DJEKIC I, VUNDUK J, I, et al. Total quality index of Agaricus bisporus mushrooms packed in modified atmosphere[J]. Journal of the Science of Food and Agriculture, 2017, 97(9): 3 013-3 021.

[4] 张晓聪.白色双孢蘑菇褐变机理及控制技术研究[D]. 福州:福建农林大学, 2010.

[5] 徐丽婧,常明昌,孟俊龙,等. UV-C处理对双孢蘑菇采后品质的影响[J]. 食品工业科技, 2016, 37(1):347-350;380.

[6] BAN Z, LI L,GUAN J,et al. Modified atmosphere packaging (MAP) and coating for improving preservation of whole and sliced Agaricus bisporus[J]. Journal of Food Science and Technology, 2014, 51(12):3 894-3 901.

[7] JAFRI M, JHA A,BUNKAR D S,et al.Quality retention of oyster mushrooms (Pleurotus florida) by a combination of chemical treatments and modified atmosphere packaging[J]. Postharvest Biology and Technology, 2013, 76: 112-118.

[8] FAN W,CAO Y,REN H, et al. Effects of ethanol fumigation on inhibiting fresh-cut yam enzymatic browning and microbial growth[J]. Journal of Food Processing and Preservation,2018,42(2):e13434.

[9] DAO T, DANTIGNY P. Control of food spoilage fungi by ethanol[J]. Food Control, 2011, 22(3-4):360-368.

[10] 杨建华,马瑜,李勃,等.乙醇气体缓释处理对鲜食葡萄保鲜效果的影响[J].保鲜与加工,2015,15(4):32-38.

[11] HAN J, TAO W, HAO H, et al. Physiology and quality responses of fresh-cut broccoli florets pretreated with ethanol vapor[J]. Journal of Food Science, 2006, 71(5):S385-S389.

[12] WANG K, CAO S, DI Y, et al. Effect of ethanol treatment on disease resistance against anthracnose rot in postharvest loquat fruit[J]. Scientia Horticulturae, 2015, 188:115-121.

[13] 刘洪丽. 鲜切莴苣、荸荠抗褐变剂筛选及其机理研究[D].武汉:华中农业大学,2016.

[14] WANG Q, NIE X, CANTWELL M. Hot water and ethanol treatments can effectively inhibit the discoloration of fresh-cut sunchoke (Helianthus tuberosus L.) tubers[J]. Postharvest Biology and Technology, 2014, 94:49-57.

[15] 张莉,许欣,刘林德.乙醇熏蒸对杏鲍菇贮藏品质的影响[J]. 食品科技, 2018, 43(11):50-54.

[16] 李云云. 乙醇熏蒸处理对双孢蘑菇保鲜品质的影响[D].重庆:西南大学,2017.

[17] 曹建康, 姜微波, 赵玉梅.果蔬采后生理生化实验指导[M]. 北京:中国轻工业出版社, 2007:142-144.

[18] ZHOU Y, DENG L, ZENG K. Enhancement of biocontrol efficacy of Pichia membranaefaciens by hot water treatment in postharvest diseases of citrus fruit[J]. Crop Protection, 2014, 63:89-96.

[19] OMS-OLIU G,AGUIL-AGUAYO I,MARTN-BELLOSO O,et al.Effects of pulsed light treatments on quality and antioxidant properties of fresh-cut mushrooms (Agaricus bisporus)[J]. Postharvest Biology and Technology, 2010, 56(3): 216-222.

[20] MOERSCHBACHER B M, NOLL U M, FLOTT B E,et al. Lignin biosynthetic enzymes in stem rust infected, resistant and susceptible near-isogenic wheat lines[J]. Physiological and Molecular Plant Pathology, 1988, 33(1): 33-46.

[21] 蒋冬花,许朝渊,张萍华,等. 3种保鲜剂对香菇保鲜效果[J]. 食品科学, 2004, 25(9):194-197.

[22] 中华人民共和国卫生部. GB 47892—2010 中国标准书号[M]. 北京: 中国标准出版社, 2010.

[23] JIANG T, WANG Q, XU S, et al. Structure and composition changes in the cell wall in relation to texture of shiitake mushrooms (Lentinula edodes) stored in modified atmosphere packaging[J]. Journal of the Science of Food and Agriculture, 2010, 90(5): 742-749.

[24] JAWORSKA G, E. The effect of preliminary processing and period of storage on the quality of frozen Boletus edulis (Bull: Fr.) mushrooms[J]. Food Chemistry, 2009, 113(4): 936-943.

[25] RAMOS B, MILLER F A, BRANDO T R S, et al. Fresh fruits and vegetables-an overview on applied methodologies to improve its quality and safety[J]. Innovative Food Science & Emerging Technologies, 2013, 20(1): 1-15.

[26] 刘文玮. 外源乙醇对采后薄皮甜瓜乙烯合成及其贮藏品质的影响[D]. 沈阳:沈阳农业大学, 2012.

[27] 李静,李顺峰,田广瑞,等.高压二氧化碳处理对双孢蘑菇贮藏品质的影响[J]. 食品与机械, 2016, 32(2): 101-105.

[28] 俞雅琼,董明,王旭东,等.机械损伤对砀山酥梨采后生理生化变化的影响[J]. 保鲜与加工, 2011, 11(3):10-15.

[29] YAN S, YANG T, LUO Y. The mechanism of ethanol treatment on inhibiting lettuce enzymatic browning and microbial growth[J]. LWT-Food Science and Technology, 2015, 63(1): 383-390.

[30] 梁亚男,叶发银,雷琳,等.苹果汁褐变控制技术研究进展[J].食品与发酵工业,2018,44(3):280-286.

[31] 王慧倩,郑聪,王华东,等.乙醇熏蒸处理对鲜切西兰花活性成分和抗氧化活性的影响[J].食品科学,2014,35(16):250-254.

[32] CUTR A C, HOLLMANN A, CEJAS J, et al. Phenylalanine interaction with lipid monolayers at different pHs[J]. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, 2015, 135: 504-509.

[33] 路媛媛. UV-C和高CO2处理对双孢蘑菇采后生理及抗氧化品质的影响研究[D]. 北京:中国农业科学院,2016.

[34] WU S, NIE Y, ZHAO J, et al. The synergistic effects of low-concentration acidic electrolyzed water and ultrasound on the storage quality of fresh-sliced button mushrooms[J]. Food and bioprocess technology, 2018, 11(2): 314-323.

[35] LI B, DING Y,TANG X,et al. Effect of L-arginine on maintaining storage quality of the white button mushroom (Agaricus bisporus)[J]. Food and Bioprocess Technology, 2019, 12(4): 563-574.

[36] ONG M K, ALI A, ALDERSON P G, et al. Effect of different concentrations of ozone on physiological changes associated to gas exchange, fruit ripening, fruit surface quality and defence-related enzymes levels in papaya fruit during ambient storage[J]. Scientia Horticulturae, 2014, 179: 163-169.

[37] 彭益强, 刘鹏, 邓峰,等. 源于马铃薯的多酚氧化酶活性中心必需基团组成与抑制机理[J]. 化工进展, 2016, 31(2):406-411.

[38] SARAIVA J A, CLUDIA S. NUNES, COIMBRA M A. Purification and characterization of olive (Olea europaea L.) peroxidase-Evidence for the occurrence of a pectin binding peroxidase[J]. Food Chemistry, 2007, 101(4):1 571-1 579.

[39] 郭禹, 姜宇芙,钟佳,等.乙醇熏蒸对采后油豆角衰老相关生理指标的影响[J]. 食品与机械, 2016, 32(5): 144-147.

[40] SONG X, LI Y. Cell membrane damage by vacuum treatment at different pressure reduction rates[J]. Journal of Food Process Engineering, 2012, 35(6): 915-922.

[41] 马学芬,王利强,刘靖,等.乙醇气体发生剂在抗菌包装中的研究进展[J].包装工程,2012,33(23):144-149.

[42] TANO K, OUL, M K DOYON G, et al. Comparative evaluation of the effect of storage temperature fluctuation on modified atmosphere packages of selected fruit and vegetables[J]. Postharvest Biology and Technology, 2007, 46(3):212-221

[43] BRIONES G L,VAROQUAUX P,CHAMBROY Y, et al.Storage of common mushroom under controlled atmospheres[J]. International Journal of Food Science & Technology, 1992, 27(5):493-505.