食品添加剂分为化学合成物质和天然物质两大类,合成添加剂的毒性大于天然添加剂,尤其在添加剂本身质量不纯,混有有害物质或超量使用时很容易对人体造成危害,而食品业使用的绝大多数添加剂是化学合成物质,甜蜜素就是人工合成的一种甜味添加剂,它的甜度为蔗糖的30~50 倍,现被广泛用于糕点、饮料及其他食品中。由于过度使用甜蜜素,会对人体造成一定危害,如引起人体病变,出现畸形、癌症、损坏肾功能等,因此,我国食品安全标准GB 2760 中对甜蜜素在食品中的使用范围和使用限量作了明确规定,如面包和糕点中甜蜜素不得大于1.6 g/kg,饼干和饮料中甜蜜素不得大于0.65 g/kg,尽管如此,食品业的超限量、超范围违规使用仍时有发生。目前,国内外对食品中甜蜜素的研究方法主要有:高效液相色谱法[1-4]、气相色谱法[5-7]、分光光度法[8-9]、电化学法[10-13]、液-质联用法[14-19] 及气-质联用[20] 等。我国食品安全国家标准GB 1886.37—2015对甜蜜素的检测方法为高氯酸滴定法,此法所用的部分试剂具有毒性或腐蚀性,所用的溶剂冰乙酸就是一种酸性腐蚀性物质,有强烈的刺激性,对人体健康有一定危害;而滴定剂高氯酸不仅具有毒性、强的腐蚀性,还具有燃烧爆炸的危险性。而现在研究较多的高效液相色谱法、气相色谱法及液-质、气质联用等对样品的前处理工作较为繁琐、尤其是净化处理耗时较多。分光光度法虽操作简便,有较高的准确度和精密度,但灵敏度和选择性欠佳。电化学法的条件要求较为苛刻。基于此,研究简便、快速、灵敏的甜蜜素检测方法很有必要。本实验采用高灵敏共振光散射技术,借维多利亚蓝B 与甜蜜素反应生成离子缔合物,使显著增强的共振光散射信号与甜蜜素的质量浓度呈线性关系,建立了测定低脂、低蛋白类焙烤食品及饮料中甜味添加剂——甜蜜素的检测方法,该方法目前尚未见文献报道。
甜蜜素(cyclamate)标准物质:GBW(E)100066,99.3%,中国食品药品检定研究院;维多利亚蓝B(victoria blue B):99%,武汉易泰科技有限公司上海分公司;三羟甲基氨基甲烷(tris):99.9%,上海吉至生化科技有限公司;盐酸:AR级,重庆川东(化工)集团有限公司;样品:面包(1#)、饼干(2#)、果味饮料(3#)、可乐型碳酸饮料(4#),市售。
甜蜜素标准溶液:贮备液为1.00×10-3 mol/L水溶液,操作液由贮备液稀释配制成1.00×10-5 mol/L水溶液,冰箱4 ℃保存。维多利亚蓝B溶液:贮备液为1.00×10-3 mol/L水溶液,操作液由贮备液稀释配制成1.00×10-4 mol/L水溶液;Tris-HCl 溶液:由Tris 溶液和HCl 溶液混合,用pH 计测定,配成pH 3.0~9.8的系列溶液。
F-2500型荧光分光光度计,日本日立公司;EL104型电子天平,上海精密仪器仪表有限公司;TD5A-WS 型离心机,湖南湘仪离心机仪器有限公司;KQ-200VDE 超声波清洗机,昆山市超声仪器有限公司;pHS-3C 型精密酸度计,上海虹益仪器仪表有限公司。
准确称取已粉碎、混匀的低脂、低蛋白面包及饼干样品各2~3 g(精确至±0.000 1 g),加适量水,搅拌、浸提10 min,再超声20 min、离心(4 500 r/min)5~10 min,上清液用水定容至100 mL,得到待测液1# 和2#。
准确移取3#和4#饮料各10.00 mL,在温热水浴中超声20 min,用水定容至500 mL,得到待测液3#和4#。
于10 mL 具塞比色管中,准确加入2.50 mL 维多利亚蓝B 操作液、1.50 mL pH 9.27 Tris-HCl 溶液及0.00~2.00 mL 甜蜜素标准操作液,用水稀释至刻度,摇匀。静置20 min 后,在荧光分光光度计上设λex=λem=220 nm,狭缝5 nm,扫描共振光散射光谱,在光谱曲线的特征峰369 nm 处测定体系溶液的共振光散射强度IRLS及试剂空白的共振光散射强度I0,再由IRLS - I0 求得体系溶液的共振光散射增强强度ΔIRLS。
从图1可知,单独的甜蜜素标准操作液的RLS 信号非常微弱,如曲线1所示。
1-1.00×10-6 mol/L 甜蜜素; 2-2.50×10-5 mol/L 维多利亚蓝B; 3~7-0.00、0.50×10-6、1.00×10-6、1.50×10-6、2.00×10-6 mol/L 甜蜜素,2.50×10-5 mol/L 维多利亚蓝B,pH 9.27混合液
图1 甜蜜素与维多利亚蓝B 的共振光散射光谱
Fig.1 The resonance light scattering spectra of cyclamate and victoria blue B
单独的维多利亚蓝B 操作液的RLS 信号较弱,在400 nm 处有一最大散射峰,如曲线2所示。当在维多利亚蓝B 操作液中加入Tris-HCl(pH 9.27)溶液后,RLS 信号显著增强,如曲线3所示。在曲线3 溶液的基础上加入0.00~2.00 mL 的甜蜜素标准操作液,从曲线3~7可知,光谱曲线在369 nm 处有一最大特征散射峰,此峰与单独的维多利亚蓝B 相比较,红移31 nm。在体系溶液的特征峰处,一定浓度范围的甜蜜素的质量浓度(或物质的量浓度)与体系溶液的共振光散射增强强度ΔIRLS呈线性关系。故选择369 nm 作为测定波长,用于甜蜜素的定量分析。
2.2.1 反应酸度
取甜蜜素标准操作液1.00 mL、维多利亚蓝B操作液2.00 mL时,按1.4 节方法考察1.00 mL pH 3.0~9.8 范围的Tris-HCl 溶液对甜蜜素-维多利亚蓝B 体系ΔIRLS 的影响,结果见图2。从ΔIRLS-pH 曲线可知,甜蜜素与维多利亚蓝B 反应所需加入的Tris-HCl溶液的pH为9.27,当加入的溶液的pH>9.27或<9.27时,体系的ΔIRLS 均有不同程度降低,pH 9.27 时,体系的ΔIRLS较大,灵敏度较高。故实验选用pH 9.27 Tris-HCl 溶液来控制该反应的酸度。
图2 Tris-HCl 溶液酸度对ΔIRLS的影响
Fig.2 Effect of Tris-HCl solution acidity on ΔIRLS
2.2.2 Tris-HCl 溶液(pH 9.27)的用量
取甜蜜素标准操作液1.00 mL、维多利亚蓝B操作液2.00 mL,按1.4 节方法考察0.50~3.00 mL 范围的pH 9.27 Tris-HCl 溶液对甜蜜素-维多利亚蓝B 体系ΔIRLS 的影响,结果见图3。
图3 Tris-HCl(pH 9.27)用量对ΔIRLS的影响
Fig.3 Effect of pH 9.27 Tris-HCl on ΔIRLS
从ΔIRLS-VpH 9.27 曲线可知,甜蜜素与维多利亚蓝B 反应所需加入Tris-HCl溶液(pH 9.27)的最适用量为1.50 mL,溶液用量大于或小于1.50 mL,体系的ΔIRLS 均有不同程度下降。故实验选择体系灵敏度最大时的Tris-HCl(pH 9.27)溶液用量为1.50 mL。
2.2.3 维多利亚蓝B 浓度
取甜蜜素标准操作液1.00 mL、pH 9.27 Tris-HCl 溶液1.50 mL,按1.4 节方法考察0.50~3.00 mL 范围的维多利亚蓝B 操作液对甜蜜素-维多利亚蓝B 体系ΔIRLS 的影响,结果见图4。从ΔIRLS-c维多利亚蓝B 曲线可知,维多利亚蓝B 的最适浓度为2.50×10-5 mol/L(即维多利亚蓝B 操作液的最适用量为2.50 mL),当维多利亚蓝B 浓度大于或小于该值时,体系ΔIRLS 均有不同程度下降,当<2.50×10-5 mol/L 时,维多利亚蓝B 用量不够,与甜蜜素反应不完全;当>2.50×10-5 mol/L 时,又因维多利亚蓝B 过量使自身聚集作用增强从而影响与甜蜜素间的反应,灵敏度随之下降。故实验选择体系灵敏度最大时的维多利亚蓝B 溶液的浓度即2.50×10-5 mol/L。
图4 维多利亚蓝B 浓度对ΔIRLS 的影响
Fig.4 Effect of victoria blue B concentration on ΔIRLS
2.2.4 试剂加入顺序
取甜蜜素标准操作液1.00 mL、pH 9.27 Tris-HCl 溶液1.50 mL、维多利亚蓝B 操作液2.50 mL,按1.4 节方法考察这几种物质在加入顺序不同时对体系ΔIRLS 的影响。结果显示,这几种物质加入的先后顺序对甜蜜素与维多利亚蓝B 反应的ΔIRLS有一定影响。当加入顺序为维多利亚蓝B 溶液、Tris-HCl 溶液、甜蜜素溶液时,体系的ΔIRLS=1315(相对于其他加入顺序,该顺序的ΔIRLS 最大),灵敏度相对其他顺序最高。故实验选择此最佳顺序加入各物质。
2.2.5 反应时间及稳定性
按上述选定的最佳条件,考察甜蜜素与维多利亚蓝B 的反应在5~100 min 范围内对体系ΔIRLS的影响。结果显示,反应从开始至20 min 时,随着反应时间的增加,体系ΔIRLS逐渐增大,表明此时间段的反应并未完全;当反应至20~70 min 范围,随着反应时间的增加,体系的ΔIRLS 不再增大,基本处于稳定状态,表明此时间段内反应已完全,并可稳定50 min;当反应至70 min 后,体系的ΔIRLS随时间的增加而逐渐下降,表明生成的新物质在此段时间已不再稳定。故测定时间选在新物质稳定时间段内进行。
按1.4 节的实验方法,配制0.00、0.50、1.00、1.50、2.00 mL 甜蜜素标准操作液的标准系列溶液,扫描RLS 光谱,作甜蜜素的标准曲线,见图5。该方法的一元线性回归方程为ΔIRLS=14.20+7 038 ρ,相关系数r=0.999 7,线性范围为0.004~0.4 mg/L,检出限为0.003 5 mg/L,面包和饼干的定量限为2.69 mg/100 g,饮料的定量限为29.2 mg/L。
图5 甜蜜素的标准曲线
Fig.5 Standard curve of cyclamate
室温下,考察了不同质量浓度的NaCl 溶液对体系ΔIRLS 的影响。结果显示,7 400 倍的NaCl 溶液对甜蜜素的测定无影响。故离子强度不影响甜蜜素的测定。
室温下,考察了某些外来物质对测定0.201 mg/L 甜蜜素的影响。结果显示,相对误差≤±5%时,500 倍的组氨酸、L-谷氨酸、L-丙氨酸、L-色氨酸、葡萄糖、麦芽糖、蔗糖、柠檬酸三钠,200 倍的L-赖氨酸、L-白氨酸、L-亮氨酸、甘氨酸、L-异亮氨酸、乳糖
倍的柠檬酸、苹果酸、山梨酸、酒石酸、尿素、淀粉、维生素B12、安赛蜜
等不干扰测定。故本法有很好的选择性。
准确移取各待测液0.20 mL 代替1.4节实验方法中的甜蜜素标准操作液,加入最佳条件下的维多利亚蓝B 和Tris-HCl 溶液,用水定容至10 mL。按实验方法测定面包、饼干及饮料中的甜蜜素含量,并与GB 1886.37—2015比较。从表1数据可知,测定结果与GB法基本一致,统计学检验结果表明新方法具有可靠性。
表1 面包、饼干及饮料的分析结果
Table 1 Analysis results of bread, biscuit and beverage samples
样品测得值×104/mg测得样品平均值(n=5)RSD/%国标法测得值(n=5)显著性检验F检验t检验定量限1#6.75156 mg/kg1.3154 mg/kg 2.89
加标回收试验:准确称取1#和2#已粉碎、混匀的面包、饼干样品各3份,每份2~3 g(精确至±0.000 1 g),分别置于小烧杯中;准确移取3#和4#饮料各3份,每份10.00 mL,分别置于小烧杯中。在1#~4#的小烧杯样液中,分别往同一样液的3份烧杯中加入0.50、1.50和3.00 mL甜蜜素贮备液,后续操作按1.3节样品处理方法进行,制得各待测液。取各待测液0.20 mL,按实验方法测定各待测液中甜蜜素的含量(n=5),求回收率,以判断方法的准确度。结果见表2。表2中加标回收率和相对标准偏差表明新方法有较高的准确度和精密度。
表2 面包、饼干及饮料的回收试验(n=5)
Table 2 Recovery test of bread, biscuit and beverage samples (n=5)
样品本底值×104/mg加标量×104/mg测得平均值×104/mg平均回收率/%相对标准偏差/%1#6.752.016.0412.18.8112.919.21021021031.82.22.02#1.982.016.0412.13.947.8913.897.597.897.72.52.32.33#4.882.016.0412.16.8510.816.898.098.098.52.22.62.54#3.512.016.0412.15.509.5015.599.099.299.11.82.12.0
维多利亚蓝B-甜蜜素体系用于食品中甜蜜素的测定,该方法具有操作简单、灵敏度高、选择性好等优点,准确度和精密度满足定量分析要求,并有较宽的线性范围。测定结果的准确度与国标法相比无显著性差异。本方法适用于焙烤食品中低脂低蛋白的面包、饼干及饮料中甜蜜素的快速测定。
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